| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 玉米蛋白及其水解物的应用现状 | 第13-14页 |
| 1.1.1 玉米醇溶蛋白概述 | 第13页 |
| 1.1.2 玉米蛋白水解物的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2 乳状液的稳定性研究 | 第14-16页 |
| 1.2.1 乳状液概述 | 第14-15页 |
| 1.2.2 乳状液的稳定性研究 | 第15-16页 |
| 1.3 体外模拟胃肠消化的研究 | 第16-17页 |
| 1.3.1 体外模拟胃肠消化模型 | 第16页 |
| 1.3.2 玉米蛋白水解物的体外模拟消化 | 第16-17页 |
| 1.3.3 乳状液的体外模拟胃肠消化 | 第17页 |
| 1.4 抗氧化剂活性的评估方法 | 第17-18页 |
| 1.4.1 体外抗氧化实验 | 第17-18页 |
| 1.4.2 体内抗氧化实验 | 第18页 |
| 1.5 细胞氧化应激的研究 | 第18-19页 |
| 1.5.1 氧化应激概述 | 第18页 |
| 1.5.2 H_2O_2诱导氧化应激模型 | 第18-19页 |
| 1.5.3 细胞抗氧化机制研究 | 第19页 |
| 1.6 本研究的立题背景、意义及主要研究内容 | 第19-22页 |
| 1.6.1 研究背景与意义 | 第19-21页 |
| 1.6.2 研究主要内容 | 第21-22页 |
| 第二章 玉米蛋白水解物对乳状液稳定性和脂肪消化的影响 | 第22-39页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第22-23页 |
| 2.2.1 原料 | 第22页 |
| 2.2.2 试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 玉米蛋白水解物(ZH)制备 | 第23页 |
| 2.3.2 乳状液的制备 | 第23页 |
| 2.3.3 乳状液物理稳定性的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.4 乳状液氧化稳定性的测定 | 第24页 |
| 2.3.5 乳状液的静态模型消化 | 第24页 |
| 2.3.6 乳状液的动态模型消化 | 第24-25页 |
| 2.3.7 乳状液消化过程中游离脂肪酸的释放量 | 第25页 |
| 2.3.8 体外模拟脂肪消化的影响因素 | 第25-26页 |
| 2.3.9 乳状液消化过程中粒径的变化 | 第26页 |
| 2.3.10 乳状液消化过程中显微结构的表征 | 第26页 |
| 2.3.11 乳状液消化过程中单个游离脂肪酸的释放 | 第26页 |
| 2.3.12 数据处理 | 第26-27页 |
| 2.4 结果与分析 | 第27-38页 |
| 2.4.1 玉米蛋白水解物对乳状液物理稳定性的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2 玉米蛋白水解物对乳状液氧化稳定性的影响 | 第28页 |
| 2.4.3 体外消化模型及消化条件对乳状液中脂肪消化程度的影响 | 第28-31页 |
| 2.4.4 玉米蛋白水解物对乳状液肠消化阶段游离脂肪酸释放量的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.5 乳状液消化过程中粒径的变化 | 第32-33页 |
| 2.4.6 乳状液消化过程中微观结构的变化 | 第33-36页 |
| 2.4.7 乳状液消化过程中单个脂肪酸的释放情况 | 第36-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 玉米蛋白水解物及其消化产物对Caco-2细胞氧化应激损伤的保护作用 | 第39-56页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验材料与仪器设备 | 第39-41页 |
| 3.2.1 原料 | 第39页 |
| 3.2.2 试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第40页 |
| 3.2.4 细胞系 | 第40-41页 |
| 3.3 试验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 玉米蛋白水解物(ZH)制备 | 第41页 |
| 3.3.2 玉米蛋白水解物体外消化实验 | 第41页 |
| 3.3.3 体外化学法测定抗氧化活性 | 第41页 |
| 3.3.4 Caco-2细胞培养 | 第41页 |
| 3.3.5 CCK-8法测定样品对细胞的毒性 | 第41-42页 |
| 3.3.6 H_2O_2诱导氧化应激损伤Caco-2细胞模型 | 第42页 |
| 3.3.7 细胞抗氧化活性(CAA)测定 | 第42-43页 |
| 3.3.8 细胞中活性氧检测 | 第43页 |
| 3.3.9 白介素-8(IL-8)含量测定 | 第43页 |
| 3.3.10 细胞内还原型谷胱甘肽含量测定 | 第43-44页 |
| 3.3.11 脂质氧化(MDA)测定 | 第44页 |
| 3.3.12 蛋白质羰基测定 | 第44页 |
| 3.3.13 抗氧化酶活测定 | 第44页 |
| 3.3.14 统计分析 | 第44页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第44-55页 |
| 3.4.1 玉米蛋白水解物及其消化产物化学抗氧化活性 | 第44-46页 |
| 3.4.2 玉米蛋白水解物及其消化产物对Caco-2细胞的毒性研究 | 第46页 |
| 3.4.3 玉米蛋白水解物及其消化产物对H_2O_2诱导Caco-2细胞存活率和IL-8含量的影响 | 第46-49页 |
| 3.4.4 玉米蛋白水解物及其消化产物的细胞抗氧化活性(CAA) | 第49页 |
| 3.4.5 玉米蛋白水解物及其消化产物对细胞中活性氧含量的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.6 玉米蛋白水解物及其消化产物对细胞中谷胱甘肽含量的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.7 玉米蛋白水解物及其消化产物对细胞中脂质氧化的影响 | 第51页 |
| 3.4.8 玉米蛋白水解物及其消化产物对细胞中蛋白质羰基氧化的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.9 玉米蛋白水解物及其消化产物对细胞中抗氧化酶活性的影响 | 第52-55页 |
| 3.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 转录组测序分析玉米蛋白水解物胃肠消化产物对Caco-2细胞氧化应激的保护机制 | 第56-69页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 材料与设备 | 第56页 |
| 4.2.1 细胞来源 | 第56页 |
| 4.2.2 试剂与材料 | 第56页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第56页 |
| 4.3 试验方法 | 第56-58页 |
| 4.3.1 Caco-2细胞培养 | 第57页 |
| 4.3.2 样品预处理细胞 | 第57页 |
| 4.3.3 RNA提取 | 第57页 |
| 4.3.4 转录组测序 | 第57页 |
| 4.3.5 生物信息学分析 | 第57-58页 |
| 4.4 结果与分析 | 第58-67页 |
| 4.4.1 样品相关性分析 | 第58-59页 |
| 4.4.2 PCA分析 | 第59页 |
| 4.4.3 基因差异表达分析 | 第59-60页 |
| 4.4.4 差异表达基因功能注释 | 第60-61页 |
| 4.4.5 COG富集分析 | 第61-62页 |
| 4.4.6 GO富集分析 | 第62-63页 |
| 4.4.7 KEGG富集分析 | 第63-65页 |
| 4.4.8 抗氧化机制的讨论 | 第65-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 第五章 结论与展望 | 第69-71页 |
| 5.1 主要结论 | 第69-70页 |
| 5.2 展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其他科研成果 | 第81页 |
