| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第1章 引言 | 第14-23页 |
| 1.1 海藻多糖的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 紫菜多糖的研究概况 | 第14-15页 |
| 1.1.2 海藻多糖制备方法的研究概况 | 第15-16页 |
| 1.2 紫菜多糖的降解方法 | 第16-18页 |
| 1.2.1 超声波降解法 | 第16页 |
| 1.2.2 酶降解法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 化学降解法 | 第17-18页 |
| 1.3 海藻多糖的生物活性 | 第18-20页 |
| 1.3.1 海藻多糖的免疫活性 | 第18-19页 |
| 1.3.2 海藻多糖的降血脂作用 | 第19-20页 |
| 1.3.3 海藻多糖的体外抗氧化作用 | 第20页 |
| 1.3.4 其他活性 | 第20页 |
| 1.4 课题研究的背景及意义 | 第20-21页 |
| 1.5 本课题研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 条斑紫菜粗多糖的提取及降解条件的优化 | 第23-35页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 条斑紫菜多糖的提取 | 第25页 |
| 2.2.2 条斑紫菜粗多糖的降解 | 第25-26页 |
| 2.2.3 降解条件的优化 | 第26-27页 |
| 2.2.4 降解多糖的制备 | 第27页 |
| 2.3 结果分析 | 第27-34页 |
| 2.3.1 H_2O_2-Vc法降解单因素实验结果 | 第27-29页 |
| 2.3.2 响应面优化实验结果 | 第29-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第3章 条斑紫菜降解多糖的组成分析及活性研究 | 第35-53页 |
| 3.1 实验材料及设备 | 第35-37页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 3.1.2 实验器材 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-41页 |
| 3.2.1 条斑紫菜粗多糖和降解产物化学组成分析 | 第37-38页 |
| 3.2.2 紫外光谱分析 | 第38-39页 |
| 3.2.3 红外光谱分析 | 第39页 |
| 3.2.4 HPGPC测定多糖分子量 | 第39-40页 |
| 3.2.5 条斑紫菜多糖体外抗氧化实验 | 第40-41页 |
| 3.2.6 体外胆汁酸结合能力 | 第41页 |
| 3.3 实验结果分析 | 第41-51页 |
| 3.3.1 条斑紫菜粗多糖降解多糖的化学组成分析 | 第41-43页 |
| 3.3.2 PSPY和DPSPY的紫外光谱分析 | 第43页 |
| 3.3.3 红外光谱分析 | 第43-44页 |
| 3.3.4 HPGPC测定多糖分子 | 第44-45页 |
| 3.3.5 体外抗氧化实验 | 第45-50页 |
| 3.3.6 胆汁酸结合能力 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-53页 |
| 第4章 条斑紫菜降解多糖的分离纯化及组分分析 | 第53-76页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第53-55页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第53-54页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第54-55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-60页 |
| 4.2.1 DEAE-52柱层析分离纯化条斑紫菜降解多糖 | 第55-56页 |
| 4.2.2 Sephadex G-100凝胶色谱柱进一步纯化 | 第56-58页 |
| 4.2.3 各纯化组分的纯度鉴定 | 第58页 |
| 4.2.4 各个纯化组分组成分析 | 第58页 |
| 4.2.5 GC-MS测定单糖组成 | 第58-60页 |
| 4.2.6 红外光谱分析 | 第60页 |
| 4.2.7 ~(13)C NMR和~1HNMR谱图分析 | 第60页 |
| 4.3 结果与分析 | 第60-74页 |
| 4.3.1 Cellulose DEAE-52柱层析初步分离纯化 | 第60-61页 |
| 4.3.2 Sephadex G-100凝胶进一步分离纯化 | 第61-63页 |
| 4.3.3 各级纯化组分的纯度分析 | 第63-66页 |
| 4.3.4 各级分离纯化组分的组成分析 | 第66页 |
| 4.3.5 GC-MS测定单糖组成 | 第66-69页 |
| 4.3.6 红外光谱分析 | 第69-70页 |
| 4.3.7 ~(13)C NMR和~1HNMR谱图分析 | 第70-74页 |
| 4.4 本章小结 | 第74-76页 |
| 第5章 各纯化组分的体外免疫活性及抗氧化的研究 | 第76-90页 |
| 5.1 实验材料与设备 | 第76-77页 |
| 5.1.1 实验材料与试剂 | 第76-77页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第77页 |
| 5.2 实验方法 | 第77-80页 |
| 5.2.1 各纯化组分的体外免疫活性的研究 | 第78-79页 |
| 5.2.2 各纯化组分的体外抗氧化活性 | 第79页 |
| 5.2.3 数据处理与分析 | 第79-80页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第80-89页 |
| 5.3.1 MTT法检测各组分对RAW264.7巨噬细胞增殖的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.2 中性红法检测各组分对RAW264.7细胞吞噬活性的影响 | 第81-83页 |
| 5.3.3 Griess法检测多糖样品对RAW264.7细胞分泌NO的影响 | 第83-85页 |
| 5.3.4 各纯化组分的还原力 | 第85-86页 |
| 5.3.5 各纯化组分清除DPPH能力 | 第86-87页 |
| 5.3.6 各纯化组分的羟基自由基清除实验 | 第87-88页 |
| 5.3.7 各纯化组分的超氧阴离子自由基清除实验 | 第88-89页 |
| 5.4 本章小结 | 第89-90页 |
| 第6章 结论、创新点与展望 | 第90-93页 |
| 6.1 结论 | 第90-91页 |
| 6.2 创新点 | 第91-92页 |
| 6.3 展望 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-100页 |
| 附录一 缩略语表 | 第100-101页 |
| 附录二 攻读硕士期间发表的论文 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
