| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 发酵对谷物生物活性的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.1 发酵改善谷物的抗氧化活性 | 第13-14页 |
| 1.1.2 发酵增加谷物的营养成分 | 第14页 |
| 1.2 乳酸菌发酵大麦产物的生物活性 | 第14-15页 |
| 1.3 白色脂肪棕色化的研究进展 | 第15-21页 |
| 1.3.1 白色脂肪与棕色脂肪 | 第15-16页 |
| 1.3.2 白色脂肪棕色化的环境条件与物质基础 | 第16-20页 |
| 1.3.3 白色脂肪棕色化的分子机制 | 第20-21页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 1.5 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 LFBE-P制备及其对3T3-L1前脂肪细胞的作用 | 第23-40页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 试验材料与仪器设备 | 第23-25页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.3 试验方法 | 第25-30页 |
| 2.3.1 植物乳杆菌发酵大麦提取物(LFBE)的制备 | 第25页 |
| 2.3.2 植物乳杆菌发酵大麦分离蛋白(LFBE-P)的制备 | 第25页 |
| 2.3.3 蛋白质含量的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.4 SDS-PAGE分析蛋白质 | 第26-27页 |
| 2.3.5 3T3-L1前脂肪细胞的复苏、传代和冻存 | 第27-28页 |
| 2.3.6 3T3-L1前脂肪细胞活力的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.7 3T3-L1前脂肪细胞的诱导分化 | 第29页 |
| 2.3.8 3T3-L1前脂肪细胞葡萄糖消耗量的测定 | 第29页 |
| 2.3.9 RT-PCR检测基因的相对表达量 | 第29-30页 |
| 2.3.10 统计方法 | 第30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 2.4.1 冷冻干燥和盐析对LFBE-P回收率的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.2 LFBE-P和RBE-P的比较分析 | 第31-33页 |
| 2.4.3 LFBE-P和RBE-P对3T3-L1前脂肪细胞活力的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.4 LFBE-P和RBE-P对3T3-L1成熟脂肪细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.5 LFBE-P和RBE-P对3T3-L1成熟脂肪细胞棕色化基因表达的影响 | 第35-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 LFBE-P的分离纯化及其活性组分筛选 | 第40-58页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 试验材料与仪器设备 | 第40-41页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第41页 |
| 3.3 试验方法 | 第41-45页 |
| 3.3.1 LFBE的制备方法 | 第41页 |
| 3.3.2 LFBE-P的制备方法 | 第41页 |
| 3.3.3 发酵大麦粗蛋白(LFBE-P)的分离纯化 | 第41-42页 |
| 3.3.4 3T3-L1前脂肪细胞的诱导分化 | 第42-43页 |
| 3.3.5 3T3-L1成熟脂肪细胞甘油三酯含量测定 | 第43-44页 |
| 3.3.6 3T3-L1成熟脂肪细胞葡萄糖消耗量测定 | 第44页 |
| 3.3.7 RT-PCR测定3T3-L1成熟脂肪细胞基因相对表达量 | 第44页 |
| 3.3.8 统计方法 | 第44-45页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第45-56页 |
| 3.4.1 LFBE-P相对分子质量对3T3-L1前脂肪细胞棕色化的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.2 阴离子交换层析及其活性成分筛选 | 第46-48页 |
| 3.4.3 凝胶柱层析分离纯化LFBE-P及其活性成分筛选 | 第48-50页 |
| 3.4.4 LFBE-P4对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第50-52页 |
| 3.4.5 LFBE-P4对3T3-L1成熟脂肪细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.6 LFBE-P4对3T3-L1成熟脂肪细胞TG含量的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.7 LFBE-P4对3T3-L1成熟脂肪细胞线粒体含量的影响 | 第55-56页 |
| 3.5 本章小结 | 第56-58页 |
| 第四章 LFBE-P4诱导3T3-L1前脂肪细胞棕色化的机制 | 第58-68页 |
| 4.1 引言 | 第58页 |
| 4.2 试验材料与仪器设备 | 第58-59页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第58页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第58-59页 |
| 4.3 试验方法 | 第59-61页 |
| 4.3.1 LFBE的制备方法 | 第59页 |
| 4.3.2 LFBE-P4的制备方法 | 第59页 |
| 4.3.3 3T3-L1前脂肪细胞的诱导分化 | 第59页 |
| 4.3.4 3T3-L1前脂肪细胞基因转录水平的测定 | 第59-60页 |
| 4.3.5 蛋白质印迹法(WesternBlot)测定UCP1的表达量 | 第60-61页 |
| 4.3.6 统计方法 | 第61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-67页 |
| 4.4.1 LFBE-P4对3T3-L1前脂肪细胞棕色化基因的调控 | 第61-63页 |
| 4.4.2 LFBE-P4对3T3-L1前脂肪细胞分化过程棕色化基因的调控 | 第63-64页 |
| 4.4.3 LFBE-P4对3T3-L1成熟脂肪细胞棕色化相关基因表达的影响 | 第64-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-69页 |
| 5.1 结论 | 第68页 |
| 5.2 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 在读学位期间发表论文 | 第78页 |
