| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-31页 |
| 1.1 鱼类腐败 | 第15-18页 |
| 1.1.1 鱼类腐败机制 | 第15-16页 |
| 1.1.2 鱼类腐败微生物及特定腐败菌 | 第16-17页 |
| 1.1.3 腐败过程中微生物的相互作用 | 第17-18页 |
| 1.2 细菌群体感应(Quorum sensing,QS) | 第18-22页 |
| 1.2.1 细菌QS研究历史和进程 | 第18-19页 |
| 1.2.2 革兰氏阴性菌AHL介导的群体感应系统 | 第19-21页 |
| 1.2.3 细菌种间LuxS/AI-2群体感应 | 第21-22页 |
| 1.2.4 革兰氏阳性菌寡肽介导的群体感应系统 | 第22页 |
| 1.3 群体感应调控的生物学功能 | 第22-23页 |
| 1.3.1 群体感应调控的生物学功能 | 第22-23页 |
| 1.3.2 蛋白质组学在生物学功能研究中应用 | 第23页 |
| 1.4 群体感应信号分子检测方法 | 第23-25页 |
| 1.4.1 报告菌株检测方法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 报告菌薄层层析法(TCL-biosensor) | 第24页 |
| 1.4.3 理化方法 | 第24-25页 |
| 1.5 群体感应与食品腐败 | 第25-27页 |
| 1.6 群体感应阻断与食品防腐 | 第27-28页 |
| 1.6.1 AHL降解酶 | 第27-28页 |
| 1.6.2 AHL拮抗物 | 第28页 |
| 1.6.3 AHL合成抑制 | 第28页 |
| 1.7 课题研究意义、内容及技术路线 | 第28-31页 |
| 1.7.1 课题研究意义 | 第29页 |
| 1.7.2 课题研究内容 | 第29-30页 |
| 1.7.3 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 真空包装鲟鱼肉冷藏过程中品质变化及特定腐败菌的确定 | 第31-54页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第32页 |
| 2.2 试验方法 | 第32-37页 |
| 2.2.1 真空包装鲟鱼肉4℃储藏过程中品质变化规律研究及优势腐败菌的确定 | 第32-35页 |
| 2.2.2 优势腐败菌致腐能力分析 | 第35-36页 |
| 2.2.3 数据统计分析方法 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-52页 |
| 2.3.1 真空包装鲟鱼肉4℃储藏过程中品质变化规律研究及优势腐败菌的确定 | 第37-46页 |
| 2.3.2 优势腐败菌致腐能力分析及特定腐败菌鉴定 | 第46-52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-53页 |
| 2.5 本章结论 | 第53-54页 |
| 第三章 鲟鱼特定腐败菌AHLs信号分子的产生与鉴定 | 第54-71页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第54-56页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第54-55页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第55-56页 |
| 3.2 试验方法 | 第56-57页 |
| 3.2.1 报告菌平板T字划线法 | 第56页 |
| 3.2.2 薄层层析-生物传感器法(TLC-Biosensor) | 第56页 |
| 3.2.3 高效液相色谱-质谱法(HPLC/MS)法 | 第56-57页 |
| 3.3 结果与分析 | 第57-68页 |
| 3.3.1 报告菌平板T字划线法检测AHLs | 第57-58页 |
| 3.3.2 薄层层析-生物传感器法(TLC-Biosensor)检测AHLs | 第58-60页 |
| 3.3.3 高效液相色谱-质谱法(HPLC/MS)法检测AHLs | 第60-68页 |
| 3.4 讨论 | 第68-69页 |
| 3.5 本章结论 | 第69-71页 |
| 第四章 维氏气单胞菌A. veronii LP-11 QS调控的腐败生物学功能研究 | 第71-101页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第71-73页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第71-73页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第73页 |
| 4.2 试验方法 | 第73-80页 |
| 4.2.1 β半乳糖苷酶法 | 第73页 |
| 4.2.2 A. veronii LP-11生长过程中AHLs信号分子检测 | 第73页 |
| 4.2.3 不同量淬灭酶处理对A. veronii LP-11AHLs信号分子淬灭效果检测 | 第73-74页 |
| 4.2.4 淬灭酶处理对A.veronii LP-11生长影响检测 | 第74页 |
| 4.2.5 淬灭酶处理对A.veronii LP-11分泌蛋白酶活影响检测 | 第74页 |
| 4.2.6 淬灭酶处理对A.veronii LP-11运动性影响检测 | 第74-75页 |
| 4.2.7 淬灭酶处理对A.veronii LP-11粘附性影响检测 | 第75页 |
| 4.2.8 淬灭酶处理对A.veronii LP-1蛋白表达情况影响检测 | 第75-80页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第80-100页 |
| 4.3.1 β半乳糖苷酶法检测AHLs | 第80-81页 |
| 4.3.2 A. veronii LP-11生长过程中AHLs信号分子的变化 | 第81-82页 |
| 4.3.3 不同量淬灭酶处理对A. veronii AHLs信号分子淬灭效果的影响 | 第82-83页 |
| 4.3.4 淬灭酶处理对菌株A. veronii LP-11生长的影响 | 第83页 |
| 4.3.5 淬灭酶处理对A.veronii LP-11分泌蛋白酶活的影响 | 第83-84页 |
| 4.3.6 淬灭酶处理对A.veronii LP-11运动性的影响 | 第84-85页 |
| 4.3.7 淬灭酶处理对A.veronii LP-11粘附性的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.8 淬灭酶处理A. veronii LP-11胞外蛋白质SDS-PAGE分析 | 第86-87页 |
| 4.3.9 淬灭酶处理A. veronii LP-11胞内蛋白质SDS-PAGE电泳分析 | 第87-88页 |
| 4.3.10 淬灭酶处理A. veronii LP-11蛋白质组学分析 | 第88-100页 |
| 4.4 本章结论 | 第100-101页 |
| 第五章 QS淬灭酶结合nisin对鲟鱼防腐保鲜效果研究 | 第101-114页 |
| 5.1 材料与试剂 | 第101-102页 |
| 5.1.1 样品采集 | 第101页 |
| 5.1.2 培养基 | 第101-102页 |
| 5.1.3 试剂 | 第102页 |
| 5.1.4 主要仪器设备 | 第102页 |
| 5.2 试验方法 | 第102-104页 |
| 5.2.1 淬灭酶和nisin溶液的制备 | 第102页 |
| 5.2.2 鲟鱼样品的处理 | 第102-103页 |
| 5.2.3 微生物分析方法 | 第103页 |
| 5.2.4 感官分析方法 | 第103页 |
| 5.2.5 TVB-N测定 | 第103页 |
| 5.2.6 生物胺分析方法 | 第103页 |
| 5.2.7 统计分析 | 第103-104页 |
| 5.3 结果与分析 | 第104-110页 |
| 5.3.1 微生物分析 | 第104-107页 |
| 5.3.2 感官品质分析 | 第107-108页 |
| 5.3.3 TVB-N分析 | 第108-109页 |
| 5.3.4 生物胺分析 | 第109-110页 |
| 5.4 讨论 | 第110-112页 |
| 5.5 本章结论 | 第112-114页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第114-116页 |
| 6.1 全文总结 | 第114-115页 |
| 6.2 创新点 | 第115页 |
| 6.3 展望 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 个人简介 | 第130-131页 |
