| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-27页 |
| 1.1 课题的来源 | 第10页 |
| 1.2 课题研究的背景和意义 | 第10-11页 |
| 1.3 辐射损伤机制及防护剂的研究进展 | 第11-15页 |
| 1.3.1 辐射造成机体损伤的机制 | 第12-13页 |
| 1.3.2 国内外辐射防护剂的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3.3 辐射防护剂的分类 | 第14-15页 |
| 1.4 天然辐射防护剂的研究概况 | 第15-18页 |
| 1.4.1 植物多酚类 | 第16页 |
| 1.4.2 植物多糖类 | 第16-17页 |
| 1.4.3 生物碱类 | 第17页 |
| 1.4.4 皂甙类 | 第17页 |
| 1.4.5 花青素类 | 第17-18页 |
| 1.4.6 维生素类 | 第18页 |
| 1.5 多糖的国内外研究进展 | 第18-24页 |
| 1.5.1 多糖的构效关系 | 第18页 |
| 1.5.2 多糖的生物活性 | 第18-20页 |
| 1.5.3 多糖的提取方法 | 第20-21页 |
| 1.5.4 多糖的初步分离方法 | 第21页 |
| 1.5.5 多糖的分级纯化方法 | 第21-22页 |
| 1.5.6 多糖的硫酸酯化修饰 | 第22-24页 |
| 1.5.7 多糖的辐射防护机制 | 第24页 |
| 1.6 黑木耳多糖的国内研外究进展 | 第24-25页 |
| 1.6.1 黑木耳概述 | 第24-25页 |
| 1.6.2 黑木耳多糖的化学修饰 | 第25页 |
| 1.7 主要研究内容 | 第25-27页 |
| 第2章 材料与方法 | 第27-42页 |
| 2.1 实验材料与仪器设备 | 第27-30页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.3 实验试剂及药品 | 第27-28页 |
| 2.1.4 实验仪器与设备 | 第28-30页 |
| 2.2 黑木耳多糖的提取及抗氧化片段的筛选 | 第30-33页 |
| 2.2.1 多糖含量的测定方法 | 第30-31页 |
| 2.2.2 原料预处理 | 第31页 |
| 2.2.3 黑木耳多糖提取工艺优化 | 第31页 |
| 2.2.4 超声辅助提取多糖（NAAP）的体外抗氧化活性测定 | 第31-33页 |
| 2.2.5 乙醇对黑木耳多糖进行分级（NAAP） | 第33页 |
| 2.3 黑木耳多糖的硫酸酯化修饰 | 第33-37页 |
| 2.3.1 氯磺酸-N，N二甲基甲酰胺法（CAS-DMF）修饰黑木耳多糖 | 第33-34页 |
| 2.3.2 取代度的测定 | 第34-35页 |
| 2.3.3 硫酸酯化黑木耳多糖（SNAAP）结构分析 | 第35-37页 |
| 2.4 硫酸酯化黑木耳多糖辐射防护作用的研究 | 第37-41页 |
| 2.4.1 实验动物分组及饲养 | 第37页 |
| 2.4.2 辐射模型建立 | 第37页 |
| 2.4.3 小鼠体重变化 | 第37页 |
| 2.4.4 小鼠免疫指标测定 | 第37-39页 |
| 2.4.5 小鼠氧化应激指标测定 | 第39-40页 |
| 2.4.6 小鼠肾脏代谢功能的影响 | 第40-41页 |
| 2.5 统计分析 | 第41-42页 |
| 第3章 黑木耳多糖的提取及抗氧化片段的筛选 | 第42-60页 |
| 3.1 超声辅助提取黑木耳多糖的工艺及优化 | 第42-54页 |
| 3.1.1 超声辅助提取黑木耳多糖的单因素分析 | 第42-44页 |
| 3.1.2 超声辅助提取法提取多糖响应面优化工艺结果 | 第44-48页 |
| 3.1.3 黑木耳多糖的体外抗氧化活性分析 | 第48-54页 |
| 3.2 黑木耳多糖提取方法的比较 | 第54-55页 |
| 3.3 黑木耳多糖活性的筛选 | 第55-59页 |
| 3.3.1 黑木耳分级多糖对ABTS+自由基清除能力的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.2 黑木耳分级多糖对DPPH自由基清除能力的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.3 黑木耳分级多糖对羟基自由基清除能力的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.4 黑木耳分级多糖对总还原力的影响 | 第58-59页 |
| 3.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第4章 黑木耳多糖的硫酸酯化修饰及结构分析 | 第60-74页 |
| 4.1 CAS-DMF修饰黑木耳多糖的工艺及优化 | 第60-66页 |
| 4.1.1 CAS-DMF修饰黑木耳多糖的单因素试验结果 | 第60-62页 |
| 4.1.2 响应面优化CAS-DMF法修饰黑木耳多糖的工艺结果 | 第62-66页 |
| 4.2 硫酸酯化黑木耳多糖（SNAAP）的结构分析 | 第66-72页 |
| 4.2.1 红外光谱分析 | 第66-68页 |
| 4.2.2 紫外光谱分析 | 第68-69页 |
| 4.2.3 分子量测定 | 第69-70页 |
| 4.2.4 单糖组成分析 | 第70-71页 |
| 4.2.5 扫描电镜分析 | 第71-72页 |
| 4.3 本章小结 | 第72-74页 |
| 第5章 SNAAP对小鼠辐射防护作用的研究 | 第74-91页 |
| 5.1 SNAAP对辐射诱导小鼠体重的影响 | 第74页 |
| 5.2 SNAAP对小鼠免疫指标的影响 | 第74-81页 |
| 5.2.1 SNAAP对小鼠免疫器官指数的影响 | 第75-76页 |
| 5.2.2 SNAAP对小鼠单核细胞吞噬能力的影响 | 第76-77页 |
| 5.2.3 SNAAP对小鼠脾淋巴细胞转化能力的影响 | 第77-78页 |
| 5.2.4 SNAAP对小鼠体内IL-2、IL-12、INF-γ含量的影响 | 第78-81页 |
| 5.3 SNAAP对小鼠体内氧化应激指标的影响 | 第81-86页 |
| 5.3.1 SNAAP对小鼠血清中SOD活性的影响 | 第81-82页 |
| 5.3.2 SNAAP对小鼠血清中CAT活性的影响 | 第82-83页 |
| 5.3.3 SNAAP对小鼠血清中GSH活性的影响 | 第83-84页 |
| 5.3.4 SNAAP对小鼠血清中MDA含量的影响 | 第84-85页 |
| 5.3.5 SNAAP对小鼠血清中LDH含量的影响 | 第85-86页 |
| 5.4 SNAAP对小鼠肾脏代谢功能的影响 | 第86-90页 |
| 5.4.1 SNAAP对小鼠血清中羰基蛋白含量的影响 | 第87-88页 |
| 5.4.2 SNAAP对小鼠血清中肌酐含量的影响 | 第88-89页 |
| 5.4.3 SNAAP对小鼠血清中尿素氮含量的影响 | 第89-90页 |
| 5.5 本章小结 | 第90-91页 |
| 结论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-104页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第104-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
