| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 自由基与氧化应激 | 第12页 |
| 1.2 全谷物 | 第12-13页 |
| 1.3 全谷物的植物化学成分 | 第13-14页 |
| 1.3.1 高粱 | 第13页 |
| 1.3.2 青稞 | 第13-14页 |
| 1.3.3 紫米 | 第14页 |
| 1.3.4 大黄米 | 第14页 |
| 1.4 抗氧化活性评价方法 | 第14-17页 |
| 1.4.1 清除DPPH自由基能力 | 第14页 |
| 1.4.2 清除ABTS自由基能力 | 第14-15页 |
| 1.4.3 FRAP抗氧化能力 | 第15页 |
| 1.4.4 ORAC抗氧化能力 | 第15页 |
| 1.4.5 清除超氧自由基能力 | 第15页 |
| 1.4.6 清除羟基自由基能力 | 第15页 |
| 1.4.7 螯合金属离子 | 第15页 |
| 1.4.8 HPLC-DPPH法 | 第15-16页 |
| 1.4.9 细胞抗氧化法 | 第16-17页 |
| 1.4.10 动物氧化应激模型 | 第17页 |
| 1.5 立题背景和意义 | 第17-19页 |
| 1.6 本课题的研究目的和内容 | 第19-21页 |
| 1.6.1 研究目的 | 第19页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 谷物提取物中抗氧化成分分析 | 第21-38页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 主要材料和试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2 主要仪器和设备 | 第22页 |
| 2.2.3 谷物提取物制备 | 第22-23页 |
| 2.2.4 基本成分测定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 总酚的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 总黄酮的测定 | 第24页 |
| 2.2.7 总花色苷的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.8 多酚分析 | 第25页 |
| 2.2.9 谷维素和维生素E的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.10 脂肪酸的测定 | 第26页 |
| 2.2.11 数据处理与分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-36页 |
| 2.3.1 谷物的基本成分分析 | 第26-27页 |
| 2.3.2 谷物的总酚含量 | 第27-28页 |
| 2.3.3 谷物的总黄酮含量 | 第28-29页 |
| 2.3.4 谷物的花色苷含量 | 第29-30页 |
| 2.3.5 谷物的酚酸成分分析 | 第30页 |
| 2.3.6 谷物总提取物中的多酚组成 | 第30-35页 |
| 2.3.7 维生素E和谷维素的含量 | 第35-36页 |
| 2.3.8 脂肪酸含量分析 | 第36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 谷物多酚提取物的体外抗氧化活性及其对人肝癌HepG2细胞的抗增殖作用 | 第38-53页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料与方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 主要材料和试剂 | 第38页 |
| 3.2.2 主要仪器和设备 | 第38页 |
| 3.2.3 提取物的制备 | 第38-39页 |
| 3.2.4 清除DPPH自由基的能力 | 第39页 |
| 3.2.5 清除ABTS~(+·)自由基的能力 | 第39页 |
| 3.2.6 FRAP抗氧化能力 | 第39页 |
| 3.2.7 ORAC抗氧化能力 | 第39页 |
| 3.2.8 超氧阴离子自由基清除能力 | 第39页 |
| 3.2.9 羟自由基清除能力 | 第39-40页 |
| 3.2.10 螯合金属离子能力 | 第40页 |
| 3.2.11 抑制H_2O_2诱导的红细胞溶血性 | 第40页 |
| 3.2.12 细胞抗氧化活性实验 | 第40页 |
| 3.2.13 细胞毒性和抗增殖试验 | 第40-41页 |
| 3.2.14 数据处理与分析 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-52页 |
| 3.3.1 清除DPPH自由基的能力 | 第41-43页 |
| 3.3.2 清除ABTS~(+·)自由基的能力 | 第43-44页 |
| 3.3.3 FRAP抗氧化能力 | 第44-45页 |
| 3.3.4 ORAC抗氧化能力 | 第45-46页 |
| 3.3.5 清除超氧阴离子自由基能力 | 第46页 |
| 3.3.6 清除羟基自由基的能力 | 第46-47页 |
| 3.3.7 螯合金属离子的能力 | 第47-48页 |
| 3.3.8 抑制小鼠红细胞血溶性作用 | 第48页 |
| 3.3.9 细胞抗氧化能力 | 第48-50页 |
| 3.3.10 抗增殖作用 | 第50-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 谷物多酚提取物对PC12细胞氧化应激的保护作用及其分子机制 | 第53-72页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-55页 |
| 4.2.1 主要材料和试剂 | 第53页 |
| 4.2.2 主要仪器和设备 | 第53页 |
| 4.2.4 PC12细胞培养和分组 | 第53-54页 |
| 4.2.5 氧自由基清除能力 | 第54页 |
| 4.2.6 细胞内抗氧化系统 | 第54页 |
| 4.2.7 细胞周期和凋亡的测定 | 第54页 |
| 4.2.8 Capase-3 酶活的测定 | 第54页 |
| 4.2.9 钙离子浓度的测定 | 第54-55页 |
| 4.2.10 线粒体膜电位的测定 | 第55页 |
| 4.2.11 数据处理与分析 | 第55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-70页 |
| 4.3.1 细胞存活率 | 第55-58页 |
| 4.3.2 氧自由基清除能力 | 第58-59页 |
| 4.3.3 谷物多酚对细胞内抗氧化系统的影响 | 第59-61页 |
| 4.3.4 谷物多酚对乳酸脱氢酶泄漏率的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.5 谷物多酚对细胞凋亡的影响 | 第62-65页 |
| 4.3.6 谷物多酚对细胞周期的影响 | 第65-67页 |
| 4.3.7 谷物多酚对钙离子浓度的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.8 谷物多酚对线粒体膜电位的影响 | 第68-70页 |
| 4.3.9 谷物多酚对Caspase 3 酶活性的影响 | 第70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 膳食全谷物粉和谷物多酚提取物对高脂小鼠氧化应激和血脂水平的影响 | 第72-90页 |
| 5.1 引言 | 第72页 |
| 5.2 材料与方法 | 第72-76页 |
| 5.2.1 主要材料和试剂 | 第72-73页 |
| 5.2.2 主要仪器和设备 | 第73页 |
| 5.2.3 谷物总多酚的制备 | 第73页 |
| 5.2.4 动物实验分组 | 第73-75页 |
| 5.2.5 血脂指标测定 | 第75页 |
| 5.2.6 抗氧化相关指标 | 第75页 |
| 5.2.7 抗氧化基因的测定 | 第75-76页 |
| 5.2.8 数据处理与分析 | 第76页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第76-88页 |
| 5.3.1 常规生理指标 | 第76-78页 |
| 5.3.2 血清血脂水平 | 第78-80页 |
| 5.3.3 血清抗氧化系统 | 第80-82页 |
| 5.3.4 肝脏抗氧化系统 | 第82-84页 |
| 5.3.5 肝脏HE染色分析 | 第84-87页 |
| 5.3.6 膳食谷物多酚提取物对抗氧化酶基因表达的影响 | 第87-88页 |
| 5.4 本章小结 | 第88-90页 |
| 主要结论与展望 | 第90-92页 |
| 主要结论 | 第90-91页 |
| 展望 | 第91-92页 |
| 论文创新点 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-104页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间发表及录用的论文 | 第104页 |
