| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第15-28页 |
| 1.1 人体PUFAs的合成及代谢 | 第16-21页 |
| 1.1.1 人体PUFAs的合成 | 第16-17页 |
| 1.1.2 类二十烷酸 | 第17-21页 |
| 1.2 果蝇与PUFAs | 第21页 |
| 1.3 果蝇与类二十烷酸 | 第21-24页 |
| 1.4 果蝇类二十烷酸代谢酶的同源性分析 | 第24页 |
| 1.5 研究目的、意义及技术路线 | 第24-28页 |
| 1.5.1 研究目的、意义 | 第24-25页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第26-28页 |
| 第二章 果蝇脂肪酸组成的检测 | 第28-41页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料与方法 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.2.2 主要试剂与材料 | 第28页 |
| 2.2.3 主要仪器与耗材 | 第28-29页 |
| 2.2.4 培养基的配制 | 第29页 |
| 2.2.5 饲料与果蝇体内的脂肪酸组成的检测 | 第29-31页 |
| 2.2.6 统计分析 | 第31页 |
| 2.3 结果 | 第31-39页 |
| 2.3.1 不同处理组饲料的脂肪酸含量 | 第31-32页 |
| 2.3.2 不同处理组果蝇的脂肪酸含量 | 第32-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 果蝇脂肪酸代谢产物检测方法的建立 | 第41-67页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 材料与方法 | 第42-51页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第42页 |
| 3.2.2 主要试剂与材料 | 第42-45页 |
| 3.2.3 主要仪器与耗材 | 第45页 |
| 3.2.4 主要溶液的配制 | 第45-46页 |
| 3.2.5 样品前处理 | 第46-47页 |
| 3.2.6 前处理条件优化 | 第47页 |
| 3.2.7 质谱分析方法 | 第47-48页 |
| 3.2.8 色谱分析方法 | 第48页 |
| 3.2.9 实验方法评价 | 第48-51页 |
| 3.3 结果 | 第51-65页 |
| 3.3.1 样品前处理的优化结果与分析 | 第51-53页 |
| 3.3.2 质谱条件的优化结果与分析 | 第53页 |
| 3.3.3 液相色谱条件的优化结果与分析 | 第53-56页 |
| 3.3.4 实验方法的评估结果 | 第56-65页 |
| 3.4 讨论 | 第65-67页 |
| 第四章 果蝇脂肪酸代谢产物的检测 | 第67-78页 |
| 4.1 引言 | 第67页 |
| 4.2 材料与方法 | 第67-69页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第67-68页 |
| 4.2.2 主要试剂与材料 | 第68页 |
| 4.2.3 主要仪器与耗材 | 第68页 |
| 4.2.4 主要溶液的配制 | 第68页 |
| 4.2.5 提取AA/EPA代谢产物 | 第68-69页 |
| 4.2.6 果蝇匀浆添加AA/EPA在激发条件下生产代谢产物的检测 | 第69页 |
| 4.3 结果 | 第69-75页 |
| 4.3.1 果蝇脂肪酸代谢产物的检测 | 第69-73页 |
| 4.3.2 果蝇匀浆培养脂肪酸代谢产物的检测 | 第73-75页 |
| 4.4 讨论 | 第75-78页 |
| 第五章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 5.1 主要研究结论 | 第78页 |
| 5.2 主要创新点 | 第78-79页 |
| 5.3 研究展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-85页 |
| 附录 | 第85-92页 |
| 作者简介及科研成果 | 第92页 |