| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-8页 |
| 1．绪论 | 第8-15页 |
| ·BPA的基本性质 | 第8-9页 |
| ·BPA的物理性状 | 第8页 |
| ·BPA的毒性 | 第8-9页 |
| ·BPA的污染状况 | 第9-10页 |
| ·BPA的污染 | 第9页 |
| ·罐装食品双酚A来源 | 第9页 |
| ·BPA的迁移转化 | 第9页 |
| ·BPA的限量标准 | 第9-10页 |
| ·BPA去除方法的研究现状 | 第10-12页 |
| ·物理吸附 | 第10页 |
| ·化学降解 | 第10-11页 |
| ·微生物降解 | 第11-12页 |
| ·药物缓释控技术及应用 | 第12-13页 |
| ·一般药物缓释控技术 | 第12-13页 |
| ·长效缓释控技术 | 第13页 |
| ·本项目的研究意义及主要研究内容 | 第13-15页 |
| 2．实验材料与方法 | 第15-21页 |
| ·菌株来源 | 第15页 |
| ·主要试剂与材料 | 第15页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·培养基的配制 | 第15-16页 |
| ·双酚A有益降解菌的筛选 | 第16页 |
| ·最小抑菌浓度的测定 | 第16页 |
| ·菌种的筛选 | 第16页 |
| ·罗伊氏乳杆菌降解条件优化的研究 | 第16-17页 |
| ·菌株降解来源的研究 | 第17-18页 |
| ·菌体细胞去除BPA分析 | 第17页 |
| ·菌体胞外发酵产物的提取与降解分析 | 第17页 |
| ·菌体胞内产物的提取与降解分析 | 第17-18页 |
| ·蛋白酶对胞内提取物降解双酚A的影响 | 第18页 |
| ·胞内酶缓释制剂的制备 | 第18-19页 |
| ·不同因素对双酚A粗酶活性的影响 | 第18页 |
| ·酶缓释制剂的制备 | 第18页 |
| ·BPA酶PLGA微球性质 | 第18页 |
| ·BPA酶PLGA体外释放度的测定 | 第18-19页 |
| ·实际饮料体系中酶的降解 | 第19页 |
| ·双酚A的检测 | 第19页 |
| ·双酚A的提取与净化 | 第19页 |
| ·双酚A含量的测定 | 第19页 |
| ·双酚A及其代谢产物的GC-MS检测 | 第19-20页 |
| ·酶含量的测定 | 第20页 |
| ·酶活性的测定 | 第20页 |
| ·酶缓释度的计算 | 第20-21页 |
| 3．实验结果与讨论 | 第21-37页 |
| ·BPA降解菌的筛选 | 第21-22页 |
| ·BPA对各菌株的最小抑菌浓度(MIC) | 第21页 |
| ·不同菌株对BPA的降解率 | 第21-22页 |
| ·罗伊氏乳杆菌降解产物分析 | 第22-24页 |
| ·罗伊氏乳杆菌降解条件的优化 | 第24-28页 |
| ·培养时间对BPA降解的影响 | 第24-25页 |
| ·培养液初始pH对BPA降解的影响 | 第25页 |
| ·装液量对BPA降解的影响 | 第25-26页 |
| ·接种量对BPA降解的影响 | 第26页 |
| ·初始浓度对BPA降解的影响 | 第26-27页 |
| ·温度对BPA降解的影响 | 第27页 |
| ·优化条件下BPA降解曲线 | 第27-28页 |
| ·BPA降解活性来源的研究 | 第28-31页 |
| ·菌体对BPA的吸附脱除 | 第28-29页 |
| ·胞外与胞内酶粗提液对双酚A降解的影响 | 第29-30页 |
| ·蛋白酶处理对胞内粗提液降解效果的影响 | 第30页 |
| ·硫酸铵对胞内粗提液降解效果的影响 | 第30-31页 |
| ·酶缓释制剂的制备与活性研究 | 第31-33页 |
| ·体系pH对酶活性的影响 | 第31页 |
| ·商业灭菌对酶活性的影响 | 第31-32页 |
| ·缓释材料对酶活性的影响 | 第32页 |
| ·PLGA5010 和PLGA7510 对酶缓释率的影响 | 第32-33页 |
| ·不同PLGA与PVA用量对酶缓释率的影响 | 第33页 |
| ·酶缓释微球的性质表征 | 第33页 |
| ·罐装饮料中缓释酶制剂的BPA降解应用 | 第33-37页 |
| ·实际罐装饮料中BPA缓释酶制剂的释放 | 第33-35页 |
| ·实际罐装饮料中BPA的降解 | 第35-37页 |
| 主要结论 | 第37-39页 |
| 展望 | 第39-41页 |
| 致谢 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 附录 | 第49-52页 |