菜籽蛋白及其酶水解物的制取方法改进研究
| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-19页 |
| ·菜籽蛋白制取方法 | 第12-15页 |
| ·水相法 | 第13页 |
| ·水相酶解法 | 第13页 |
| ·有机溶剂法 | 第13-14页 |
| ·双液相萃取法 | 第14页 |
| ·超滤法 | 第14-15页 |
| ·菜籽肽的制取方法 | 第15-17页 |
| ·酶法制取菜籽肽 | 第15-16页 |
| ·化学法制取菜籽肽 | 第16页 |
| ·微生物发酵法制取菜籽肽 | 第16页 |
| ·菜籽肽的分离纯化 | 第16-17页 |
| ·菜籽肽的生理活性 | 第17-18页 |
| ·菜籽肽抗氧化性 | 第17页 |
| ·菜籽肽降血压活性 | 第17-18页 |
| ·菜籽肽抗肿瘤活性 | 第18页 |
| ·菜籽肽其他活性 | 第18页 |
| ·本文研究主要内容 | 第18-19页 |
| 第二章 碱提取酸沉淀法制取菜籽蛋白的研究 | 第19-25页 |
| ·材料与方法 | 第19-21页 |
| ·材料与试剂 | 第19页 |
| ·实验仪器 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-21页 |
| ·结果与分析 | 第21-23页 |
| ·菜籽粕的主要组分 | 第21页 |
| ·碱提取菜籽蛋白的操作方法探讨 | 第21-22页 |
| ·碱液pH值对菜籽蛋白提取率的影响 | 第22页 |
| ·酸沉淀pH值对菜籽蛋白提取率的影响 | 第22-23页 |
| ·本章小结 | 第23-25页 |
| 第三章 膜分离制取可溶性菜籽蛋白 | 第25-31页 |
| ·材料与方法 | 第25-27页 |
| ·材料与试剂 | 第25-26页 |
| ·实验仪器 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-27页 |
| ·结果与讨论 | 第27-30页 |
| ·硫甙和植酸在菜籽蛋白分离产物中的分布 | 第27-28页 |
| ·膜分离去除酸溶性蛋白的硫甙和植酸的效果分析 | 第28-29页 |
| ·可溶性菜籽蛋白对DPPH自由基的清除作用 | 第29-30页 |
| ·本章小结 | 第30-31页 |
| 第四章 酶法直接水解菜籽粕制取菜籽蛋白水解物 | 第31-36页 |
| ·材料与方法 | 第31-33页 |
| ·材料与试剂 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-35页 |
| ·四种酶分别水解菜籽粕的速率研究 | 第33-34页 |
| ·菜籽蛋白水解物的凝胶层析结果分析 | 第34-35页 |
| ·本章小结 | 第35-36页 |
| 第五章 添加亚硫酸钠对酶直接水解菜籽粕的影响 | 第36-47页 |
| ·材料与方法 | 第36-38页 |
| ·材料与试剂 | 第36页 |
| ·实验仪器 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-45页 |
| ·亚硫酸钠对酶水解菜籽粕的速率的影响 | 第38-41页 |
| ·亚硫酸钠对菜籽蛋白水解物的颜色和提取率的影响 | 第41页 |
| ·膜分离对菜籽蛋白水解物中硫甙含量的影响 | 第41-42页 |
| ·亚硫酸钠对菜籽蛋白水解物的功能性质的影响 | 第42-43页 |
| ·超滤和透析过滤对菜籽蛋白水解物的功能性质的影响 | 第43页 |
| ·蛋白水解物凝胶层析结果分析 | 第43-45页 |
| ·本章小结 | 第45-47页 |
| 第六章 酶水解结合碱提取制取菜籽蛋白水解物 | 第47-52页 |
| ·材料与方法 | 第47-49页 |
| ·材料与试剂 | 第47页 |
| ·实验仪器 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-51页 |
| ·水解度和碱液pH对蛋白水解物提取率的影响 | 第49页 |
| ·加热灭酶对蛋白水解物提取率的影响 | 第49-50页 |
| ·改变灭酶方式对蛋白水解物提取率的影响 | 第50-51页 |
| ·膜分离去除菜籽水解物中的硫甙 | 第51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
