| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-31页 |
| 1.1 哈密瓜果实采后冷害症状和控制技术 | 第16-18页 |
| 1.1.1 采后冷害症状 | 第16-17页 |
| 1.1.2 采后冷害控制技术及相关机理 | 第17-18页 |
| 1.2 果实对低温胁迫的响应 | 第18-25页 |
| 1.2.1 膜组分的改变 | 第18-19页 |
| 1.2.2 活性氧清除系统的变化 | 第19-21页 |
| 1.2.3 渗透调节物质的变化 | 第21-23页 |
| 1.2.4 低温信号转导 | 第23-25页 |
| 1.3 果实低温冷害的转录调控机理 | 第25-27页 |
| 1.4 草酸对果实采后生理活性的影响 | 第27-29页 |
| 1.4.1 草酸处理对果实采后成熟进程的影响 | 第27-28页 |
| 1.4.2 草酸处理对果实采后抗冷性和抗病性的影响 | 第28-29页 |
| 1.5 研究目的意义及主要研究内容 | 第29-31页 |
| 1.5.1 研究目的与意义 | 第29-30页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第30-31页 |
| 第二章 草酸对哈密瓜果实采后冷害及品质的影响 | 第31-39页 |
| 2.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 2.1.2 处理方法 | 第32页 |
| 2.1.3 测定方法 | 第32-33页 |
| 2.1.4 数据统计与分析 | 第33页 |
| 2.2 结果与分析 | 第33-37页 |
| 2.2.1 草酸对哈密瓜果实冷害症状和冷害指数的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.2 草酸对哈密瓜果实呼吸速率和细胞膜渗透率的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.3 草酸对哈密瓜果实抗坏血酸、硬度和可溶性固形物含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.4 草酸对哈密瓜果实可滴定酸和叶绿素含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.3 讨论 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 草酸诱导哈密瓜采后耐冷性的转录组学分析 | 第39-65页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-44页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第40页 |
| 3.1.2 处理方法 | 第40页 |
| 3.1.3 O_2~-产生速率、MDA、脯氨酸及可溶性糖含量的测定 | 第40-41页 |
| 3.1.4 果实测序文库构建与Illumina测序 | 第41页 |
| 3.1.5 总RNA提取及质量检测 | 第41页 |
| 3.1.6 cDNA文库构建及其质量检测 | 第41-42页 |
| 3.1.7 生物信息分析 | 第42-44页 |
| 3.2 结果与分析 | 第44-61页 |
| 3.2.1 草酸对哈密瓜O_2~-产生速率、MDA、脯氨酸及可溶性糖含量的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 转录组测序数据质量分析 | 第45-46页 |
| 3.2.3 哈密瓜转录组的Unigene长度分布及质量统计 | 第46-47页 |
| 3.2.4 哈密瓜转录组的Unigenes功能注释及COG分类 | 第47-48页 |
| 3.2.5 CDS、SNP和SSR预测 | 第48-50页 |
| 3.2.6 差异基因概况及GO富集、KEGG代谢通路富集分析 | 第50-55页 |
| 3.2.7 活性氧(ROS)清除相关酶的差异基因表达分析 | 第55-57页 |
| 3.2.8 膜脂氧化相关酶的差异基因表达分析 | 第57-58页 |
| 3.2.9 脯氨酸合成相关酶的差异基因表达分析 | 第58-60页 |
| 3.2.10 糖代谢相关酶的差异基因表达分析 | 第60-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 第四章 草酸对哈密瓜采后抗氧化代谢的影响 | 第65-81页 |
| 4.1 材料与方法 | 第65-70页 |
| 4.1.1 试验材料和处理方法 | 第65页 |
| 4.1.2 冷害指数测定 | 第65页 |
| 4.1.3 膜渗透率和丙二醛(MDA)含量测定 | 第65-66页 |
| 4.1.4 H_2O_2的含量和O_2~-产生速率测定 | 第66页 |
| 4.1.5 还原型与氧化型谷胱甘肽含量测定 | 第66页 |
| 4.1.6 还原型与氧化型抗坏血酸含量测定 | 第66页 |
| 4.1.7 POD,CAT,SOD和APX活性测定 | 第66-67页 |
| 4.1.8 GR,DHAR和MDHAR活性测定 | 第67页 |
| 4.1.9 可溶性蛋白含量的测定 | 第67页 |
| 4.1.10 RNA提取,cDNA合成与荧光定量PCR(Q-PCR)引物分析的测定 | 第67-70页 |
| 4.1.11 数据处理与统计分析 | 第70页 |
| 4.2 结果与分析 | 第70-77页 |
| 4.2.1 草酸对哈密瓜果实冷害症状和冷害指数的影响 | 第70-71页 |
| 4.2.2 草酸对哈密瓜膜渗透率和MDA含量的影响 | 第71-72页 |
| 4.2.3 草酸对哈密瓜H_2O_2的含量和O_2~-的产生速率影响 | 第72-73页 |
| 4.2.4 草酸对哈密瓜GSH、GSSG含量及其比值影响 | 第73页 |
| 4.2.5 草酸对哈密瓜AsA、DHA含量及其比值影响 | 第73-74页 |
| 4.2.6 草酸对哈密瓜POD,CAT,SOD和APX活性的影响 | 第74-75页 |
| 4.2.7 草酸对哈密瓜GR、DHAR、MDHAR活性的影响 | 第75-76页 |
| 4.2.8 草酸对哈密瓜CmAPX,CmGR和CmPOD表达的影响 | 第76-77页 |
| 4.3 讨论 | 第77-80页 |
| 4.4 本章小结 | 第80-81页 |
| 第五章 草酸对哈密瓜采后膜脂代谢的影响 | 第81-91页 |
| 5.1 材料与方法 | 第81-83页 |
| 5.1.1 材料与处理 | 第81页 |
| 5.1.2 脂肪酸组成及含量的测定 | 第81-82页 |
| 5.1.3 脂氧合酶活性(LOX)的测定 | 第82页 |
| 5.1.4 可溶性蛋白质含量的测定 | 第82页 |
| 5.1.5 PLD活性的测定 | 第82页 |
| 5.1.6 Ca~(2+)含量的测定 | 第82页 |
| 5.1.7 RNA提取,cDNA合成与荧光定量PCR (Q-PCR)引物分析的测定 | 第82-83页 |
| 5.1.8 数据处理与统计分析 | 第83页 |
| 5.2 结果与分析 | 第83-88页 |
| 5.2.1 草酸对哈密瓜饱和脂肪酸含量的影响 | 第83-84页 |
| 5.2.2 草酸对哈密瓜不饱和脂肪酸含量的影响 | 第84-86页 |
| 5.2.3 草酸对哈密瓜脂肪酸不饱和指数和不饱和度的影响 | 第86页 |
| 5.2.4 草酸对哈密瓜脂氧合酶(LOX)和磷脂酶D(PLD)活性及Ca~(2+)含量的影响 | 第86-87页 |
| 5.2.5 草酸处理对哈密瓜CmLOX和CmPLD表达的影响 | 第87-88页 |
| 5.3 讨论 | 第88-90页 |
| 5.4 本章小结 | 第90-91页 |
| 第六章 草酸对哈密瓜采后脯氨酸代谢的影响 | 第91-100页 |
| 6.1 材料与方法 | 第91-93页 |
| 6.1.1 试验材料与方法 | 第91页 |
| 6.1.2 游离脯氨酸含量的测定 | 第91页 |
| 6.1.3 脯氨酸代谢关键酶P5CS活性的测定 | 第91-92页 |
| 6.1.4 脯氨酸代谢关键酶OAT活性的测定 | 第92页 |
| 6.1.5 脯氨酸代谢关键酶ProDH活性的测定 | 第92页 |
| 6.1.6 CmP5CS、CmOAT和CmProDH和转录因子Cm-CBF1和Cm-CBF3表达量的测定 | 第92-93页 |
| 6.1.7 数据处理与统计分析 | 第93页 |
| 6.2 结果与分析 | 第93-97页 |
| 6.2.1 草酸对哈密瓜脯氨酸含量的影响 | 第93-94页 |
| 6.2.2 草酸对哈密瓜P5CS、OAT和ProDH活性及基因表达的影响 | 第94-96页 |
| 6.2.3 草酸对哈密瓜转录因子Cm-CBF1和Cm-CBF3表达的影响 | 第96-97页 |
| 6.3 讨论 | 第97-99页 |
| 6.4 本章小结 | 第99-100页 |
| 第七章 结论 | 第100-102页 |
| 7.1 结论 | 第100页 |
| 7.2 主要创新点 | 第100-101页 |
| 7.3 展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-120页 |
| 博士期间学术成果 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
