| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩写和符号 | 第9-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 高脂膳食与肠道菌群 | 第13-16页 |
| 1.1.1 肠道菌群组成 | 第13-14页 |
| 1.1.2 高脂膳食与机体氧化还原状体 | 第14-15页 |
| 1.1.3 高脂膳食与肠道微生物 | 第15-16页 |
| 1.2 多糖类物质与肠道微生物 | 第16-17页 |
| 1.3 黄茶概述 | 第17页 |
| 1.4 黄大茶的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.5 茶多糖与肠道菌群 | 第18-19页 |
| 1.6 体外模拟肠道菌群发酵的研究 | 第19-20页 |
| 2 引言 | 第20-22页 |
| 2.1 研究目的和意义 | 第20页 |
| 2.2 研究内容和方法 | 第20-21页 |
| 2.3 技术路线 | 第21-22页 |
| 3 材料与方法 | 第22-29页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第22页 |
| 3.2 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 3.3 实验方法 | 第23-29页 |
| 3.3.1 样品制备 | 第23页 |
| 3.3.2 化学成分检测 | 第23-24页 |
| 3.3.3 清除DPPH自由基实验 | 第24页 |
| 3.3.4 清除超氧阴离子自由基实验 | 第24页 |
| 3.3.5 清除羟自由基实验 | 第24-25页 |
| 3.3.6 动物实验 | 第25页 |
| 3.3.7 氧化还原状态检测 | 第25页 |
| 3.3.8 血清中炎性因子检测 | 第25-26页 |
| 3.3.9 Western blot | 第26页 |
| 3.3.10 16S rDNA检测小鼠肠道微生物变化 | 第26-27页 |
| 3.3.11 模拟人体结肠发酵实验 | 第27页 |
| 3.3.12 发酵液中短链脂肪酸的检测 | 第27页 |
| 3.3.13 16S rDNA检测发酵液中菌群变化 | 第27-29页 |
| 4 结果与分析 | 第29-57页 |
| 4.1 黄大茶茶多糖中主要化学成分组成 | 第29页 |
| 4.1.1 对多糖、蛋白质和茶多酚含量检测 | 第29页 |
| 4.2 清除自由基实验 | 第29-31页 |
| 4.2.1 清除DPPH自由基 | 第29-30页 |
| 4.2.2 清除超氧阴离子自由基 | 第30页 |
| 4.2.3 清除对羟自由基 | 第30-31页 |
| 4.3 动物实验过程中小鼠体重、采食量和采水量变化 | 第31-32页 |
| 4.4 茶多糖对机体氧化还原状态的影响 | 第32-33页 |
| 4.4.1 茶多糖对回肠氧化还原状态的影响 | 第32-33页 |
| 4.4.2 茶多糖对肝脏氧化还原状态的影响 | 第33页 |
| 4.5 血液中IL-1?和TNF-α的变化 | 第33-34页 |
| 4.6 蛋白Claudin-1的变化 | 第34-35页 |
| 4.7 16S rDNA检测茶多糖干预饲喂高脂日粮小鼠肠道菌群变化 | 第35-47页 |
| 4.7.1 茶多糖干预对饲喂高脂小鼠肠道微生物的主成分影响 | 第35-36页 |
| 4.7.2 OTU分析 | 第36-37页 |
| 4.7.3 肠道菌群物种注释 | 第37-47页 |
| 4.8 发酵过程中短链脂肪酸的变化 | 第47-48页 |
| 4.9 发酵过程中微生物变化 | 第48-57页 |
| 4.9.1 OTU分析及物种注释 | 第48-49页 |
| 4.9.2 发酵菌群物种注释 | 第49-57页 |
| 5 讨论 | 第57-60页 |
| 5.1 茶多糖清除自由基和对小鼠氧化还原状态的影响 | 第57页 |
| 5.2 小鼠肠道内微生物结构变化 | 第57-58页 |
| 5.2.1 高脂日粮对小鼠肠道菌群结构的调节作用 | 第57-58页 |
| 5.2.2 茶多糖对小鼠肠道菌群结构的调节作用 | 第58页 |
| 5.3 体外发酵液中短链脂肪酸和微生物结构的变化 | 第58-59页 |
| 5.3.1 茶多糖对短链脂肪酸和微生物结构的影响 | 第58-59页 |
| 5.4 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
