黄豆酱中水溶性肽的提纯及抗氧化活性研究
| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 第一章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 大豆肽生物活性研究 | 第13-15页 |
| 1.1.1 降血压 | 第13页 |
| 1.1.2 抗氧化 | 第13-14页 |
| 1.1.3 降胆固醇 | 第14页 |
| 1.1.4 调节免疫 | 第14-15页 |
| 1.1.5 产生饱腹感 | 第15页 |
| 1.2 酱类中的活性物质 | 第15-16页 |
| 1.2.1 肽 | 第15页 |
| 1.2.2 异黄酮 | 第15-16页 |
| 1.2.3 类黑精 | 第16页 |
| 1.2.4 呋喃酮类 | 第16页 |
| 1.3 大豆活性肽分离纯化 | 第16-18页 |
| 1.3.1 膜分离 | 第16-17页 |
| 1.3.2 树脂分离 | 第17页 |
| 1.3.3 凝胶过滤色谱 | 第17-18页 |
| 1.3.4 离子交换色谱 | 第18页 |
| 1.3.5 高效液相色谱 | 第18页 |
| 1.3.6 毛细管电泳 | 第18页 |
| 1.4 立题的目的及意义 | 第18-19页 |
| 1.5 课题主要研究内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 水法提取黄豆酱中的肽 | 第19页 |
| 1.5.2 黄豆酱肽原液脱色及抗氧化活性研究 | 第19页 |
| 1.5.3 黄豆酱肽脱盐的研究 | 第19页 |
| 1.5.4 黄豆酱肽的纯化及高效液相色谱法测定 | 第19-20页 |
| 1.5.5 技术路线 | 第20-21页 |
| 第二章 水法提取黄豆酱中的肽 | 第21-28页 |
| 2.1 试验材料和仪器 | 第21页 |
| 2.1.1 主要试验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 肽含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.2 提取率的计算 | 第22页 |
| 2.2.3 数据处理 | 第22页 |
| 2.3 试验内容与结果分析 | 第22-24页 |
| 2.3.1 料液比对肽提取率的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.2 pH对肽提取率的影响 | 第23页 |
| 2.3.3 搅拌时间对肽提取率的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 温度对肽提取率的影响 | 第24页 |
| 2.4 二次旋转回归组合试验 | 第24-27页 |
| 2.5 结果和讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 黄豆酱肽原液脱色及抗氧化活性研究 | 第28-37页 |
| 3.1 试验材料与仪器 | 第28页 |
| 3.1.1 主要试验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 仪器 | 第28页 |
| 3.2 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 黄豆酱肽溶液的制备 | 第28-29页 |
| 3.2.2 黄豆酱肽溶液的脱色 | 第29页 |
| 3.2.3 脱色率的测定 | 第29页 |
| 3.2.4 肽存留率的测定 | 第29页 |
| 3.2.5 抗氧化活性的测定 | 第29页 |
| 3.2.6 数据处理及图形绘制 | 第29页 |
| 3.3 结果与分析 | 第29-36页 |
| 3.3.1 吸附剂用量单因素实验 | 第29-30页 |
| 3.3.2 脱色溶液pH的确定 | 第30-31页 |
| 3.3.3 脱色时间的确定 | 第31-32页 |
| 3.3.4 脱色温度的确定 | 第32-33页 |
| 3.3.5 正交组合试验 | 第33-35页 |
| 3.3.6 验证试验 | 第35-36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-37页 |
| 第四章 黄豆酱肽脱盐的研究 | 第37-43页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第37页 |
| 4.1.1 主要试验材料 | 第37页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第37页 |
| 4.2 试验方法 | 第37-39页 |
| 4.2.1 黄豆酱肽的制备 | 第37-38页 |
| 4.2.2 盐含量的测定 | 第38页 |
| 4.2.3 抗氧化活性的测定 | 第38页 |
| 4.2.4 静态吸附法筛选树脂 | 第38页 |
| 4.2.5 洗脱剂的选择 | 第38页 |
| 4.2.6 树脂的动态吸附和解析 | 第38-39页 |
| 4.2.7 最佳样品浓度的确定 | 第39页 |
| 4.2.8 最佳流速的确定 | 第39页 |
| 4.2.9 透析脱盐 | 第39页 |
| 4.3 结果与分析 | 第39-42页 |
| 4.3.1 静态吸附法筛选树脂 | 第39页 |
| 4.3.2 洗脱剂的选择 | 第39-40页 |
| 4.3.3 树脂的动态吸附和解析 | 第40-41页 |
| 4.3.4 最佳样品浓度的确定 | 第41页 |
| 4.3.5 最佳流速的确定 | 第41-42页 |
| 4.3.6 透析脱盐 | 第42页 |
| 4.3.7 脱盐后黄豆酱肽抗氧化活性测定 | 第42页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第42-43页 |
| 第五章 黄豆酱肽的纯化及高效液相色谱法测定 | 第43-51页 |
| 5.1 试验材料与仪器 | 第43页 |
| 5.1.1 主要试验材料 | 第43页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第43页 |
| 5.2 试验方法 | 第43-45页 |
| 5.2.1 样品制备 | 第43-44页 |
| 5.2.2 黄豆酱肽的超滤分离 | 第44页 |
| 5.2.3 抗氧化活性的测定 | 第44页 |
| 5.2.4 葡聚糖凝胶的预处理 | 第44页 |
| 5.2.5 最佳葡聚糖凝胶的确定 | 第44页 |
| 5.2.6 最佳流速的确定 | 第44页 |
| 5.2.7 最佳样品浓度的确定 | 第44页 |
| 5.2.8 高效液相色谱法测定 | 第44-45页 |
| 5.3 结果与分析 | 第45-50页 |
| 5.3.1 不同分子量黄豆酱肽的抗氧化活性分析 | 第45页 |
| 5.3.2 最佳葡聚糖凝胶的确定 | 第45-46页 |
| 5.3.3 最佳流速的确定 | 第46-48页 |
| 5.3.4 最佳样品浓度的确定 | 第48页 |
| 5.3.5 高效液相色谱法测定 | 第48-50页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 结论与建议 | 第51-52页 |
| 6.1 结论 | 第51页 |
| 6.2 展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
