| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 植物多酚概况 | 第9-16页 |
| 1.1.1 石榴多酚 | 第9-10页 |
| 1.1.2 茶多酚 | 第10-11页 |
| 1.1.3 葡萄多酚 | 第11-12页 |
| 1.1.4 山楂多酚 | 第12-13页 |
| 1.1.5 苹果多酚 | 第13-14页 |
| 1.1.6 其它多酚 | 第14-16页 |
| 1.2 胆固醇流出途径相应调控因子概述 | 第16-18页 |
| 1.2.1 LXR | 第16-17页 |
| 1.2.2 ABCA1和ABCG1 | 第17页 |
| 1.2.3 PPAR | 第17-18页 |
| 1.3 本课题研究的目的和意义 | 第18-21页 |
| 第2章 试验材料与方法 | 第21-35页 |
| 2.1 试验材料和试剂 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要试验溶液 | 第23页 |
| 2.2 试验仪器和设备 | 第23-24页 |
| 2.3 试验方法 | 第24-35页 |
| 2.3.1 石榴皮多酚的提取及纯化 | 第24-25页 |
| 2.3.2 石榴皮多酚纯化物的HPLC分析 | 第25-26页 |
| 2.3.3 HL7702肝细胞的传代、冻存及复苏 | 第26-27页 |
| 2.3.4 建立高脂肪HL7702肝细胞模型 | 第27页 |
| 2.3.5 MTT法筛选六种植物多酚的共同最佳作用浓度 | 第27-28页 |
| 2.3.6 六种植物多酚对高脂肪HL7702肝细胞的降脂作用 | 第28-29页 |
| 2.3.7 油红O染色法评价脂滴积累情况 | 第29页 |
| 2.3.8 总胆固醇(TC)和甘油三酯(TG)的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.9 谷草转氨酶(AST)和谷丙转氨酶(ALT)的测定 | 第30页 |
| 2.3.10 胆固醇流出机制实验分组处理 | 第30页 |
| 2.3.11 提取各组总RNA | 第30-31页 |
| 2.3.12 反转录cDNA | 第31-32页 |
| 2.3.13 引物设计 | 第32页 |
| 2.3.14 实时定量PCR(real-time PCR) | 第32-33页 |
| 2.3.15 数据处理 | 第33-35页 |
| 第3章 结果分析及讨论 | 第35-57页 |
| 3.1 石榴皮多酚纯化物成分的高效液相色谱分析 | 第35-36页 |
| 3.1.1 纯化方法的选择 | 第35页 |
| 3.1.2 高效液相色谱分析多酚组成 | 第35-36页 |
| 3.1.3 小结 | 第36页 |
| 3.2 高脂肪HL7702肝细胞模型的建立 | 第36-41页 |
| 3.2.1 建模方法的选择 | 第36-37页 |
| 3.2.2 油红O染色 | 第37页 |
| 3.2.3 TC和TG测定 | 第37-39页 |
| 3.2.4 AST和ALT测定 | 第39-40页 |
| 3.2.5 小结 | 第40-41页 |
| 3.3 六种植物多酚降脂作用的比较 | 第41-51页 |
| 3.3.1 六种植物多酚的选择 | 第41页 |
| 3.3.2 MTT法筛选六种植物多酚共同最佳作用浓度 | 第41-45页 |
| 3.3.3 油红O染色评价不同植物多酚的降脂效果 | 第45-47页 |
| 3.3.4 TC和TG的变化 | 第47-49页 |
| 3.3.5 AST和ALT的变化 | 第49-50页 |
| 3.3.6 小结 | 第50-51页 |
| 3.4 胆固醇流出分子机制研究 | 第51-57页 |
| 3.4.1 受试植物多酚的选择 | 第51-52页 |
| 3.4.2 Real Time-PCR条件优化结果 | 第52页 |
| 3.4.3 LXRα-ABCA1通路基因表达情况 | 第52-54页 |
| 3.4.4 小结 | 第54-57页 |
| 第4章 结论 | 第57-59页 |
| 4.1 明确了石榴多酚纯化物的组成 | 第57页 |
| 4.2 建立了高脂肪HL7702肝细胞模型 | 第57页 |
| 4.3 比较了六种植物多酚降脂作用 | 第57-58页 |
| 4.4 研究了胆固醇流出的相关机制 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第71页 |
