| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第9-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-29页 |
| ·赭曲霉毒素A概述 | 第15-20页 |
| ·赭曲霉毒素A的理化性质 | 第15页 |
| ·赭曲霉毒素A的产毒菌及产毒条件 | 第15-16页 |
| ·赭曲霉毒素A的致毒机理 | 第16-20页 |
| ·赭曲霉毒素A脱毒及缓解致毒效果的研究进展 | 第20-24页 |
| ·OTA的脱毒研究 | 第20-21页 |
| ·缓解OTA致毒效果的相关研究进展 | 第21-24页 |
| ·谷胱甘肽在缓解真菌毒素致毒的作用 | 第21-23页 |
| ·锌离子在缓解真菌毒素致毒过程中的作用 | 第23-24页 |
| ·组学技术在逆境胁迫研究中的应用现状 | 第24-27页 |
| ·研究目的及内容 | 第27-29页 |
| ·研究目的及意义 | 第27-28页 |
| ·研究内容 | 第28-29页 |
| 第二章 OTA与BSO共同作用下拟南芥叶片细胞死亡的蛋白组学研究 | 第29-44页 |
| ·材料、试剂及设备 | 第29-30页 |
| ·试验材料 | 第29页 |
| ·主要试剂 | 第29-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-37页 |
| ·拟南芥的种植 | 第30-31页 |
| ·MS固体培养基的制备 | 第30-31页 |
| ·播种 | 第31页 |
| ·土壤培养 | 第31页 |
| ·叶片的处理 | 第31页 |
| ·叶片总蛋白的提取 | 第31-32页 |
| ·蛋白定量 | 第32页 |
| ·双向电泳 | 第32-37页 |
| ·数据处理 | 第37页 |
| ·结果与分析 | 第37-40页 |
| ·双向电泳蛋白鉴定结果 | 第37-39页 |
| ·差异蛋白点的GO分析 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-41页 |
| ·经GSTs催化的GSH相关代谢 | 第40页 |
| ·能量代谢和光合作用 | 第40-41页 |
| ·其他 | 第41页 |
| ·本章小结 | 第41-44页 |
| 第三章 拟南芥幼苗RNA-Seq转录组学分析谷胱甘肽在OTA致毒中的作用机制 | 第44-60页 |
| ·材料、试剂及设备 | 第44-45页 |
| ·试验方法 | 第45-47页 |
| ·拟南芥的种植 | 第45页 |
| ·突变体验证 | 第45页 |
| ·移苗处理 | 第45-46页 |
| ·拟南芥幼苗总RNA提取 | 第46页 |
| ·拟南芥幼苗RNA-Seq实验 | 第46-47页 |
| ·数据处理 | 第47页 |
| ·结果与分析 | 第47-56页 |
| ·RNA质量检测 | 第47页 |
| ·测序数据质量分析 | 第47-48页 |
| ·差异基因分析 | 第48-56页 |
| ·总体差异基因分析 | 第48-49页 |
| ·差异基因的GO分析 | 第49-51页 |
| ·差异基因维恩图分析 | 第51-52页 |
| ·GSH代谢相关差异基因 | 第52-54页 |
| ·根发育相关差异基因 | 第54-56页 |
| ·讨论 | 第56-59页 |
| ·GSH代谢相关基因 | 第56-57页 |
| ·根发育相关基因 | 第57-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 第四章 GSH调节剂对OTA致HepG2细胞毒性的影响 | 第60-71页 |
| ·材料、试剂及设备 | 第60-61页 |
| ·实验材料 | 第60页 |
| ·主要试剂 | 第60-61页 |
| ·主要仪器设备 | 第61页 |
| ·实验方法 | 第61-64页 |
| ·细胞培养及处理 | 第61-62页 |
| ·CCK-8法测定细胞活力 | 第62页 |
| ·总谷胱甘肽含量测定 | 第62-63页 |
| ·总SOD活性检测 | 第63页 |
| ·氧化物酶活性检测 | 第63-64页 |
| ·数据处理 | 第64页 |
| ·结果与分析 | 第64-68页 |
| ·BSO,DHA,NAC对HepG2细胞存活率的影响 | 第64-66页 |
| ·BSO,DHA,NAC预处理对HepG2细胞总谷胱甘肽含量的影响 | 第66页 |
| ·BSO,DHA,NAC预处理对OTA抑制HepG2存活率的影响 | 第66-67页 |
| ·BSO,DHA,NAC对HepG2活性氧清除酶SOD,CAT的影响 | 第67-68页 |
| ·讨论 | 第68-70页 |
| ·BSO,DHA,NAC在细胞抗逆研究中的应用及对OTA降低细胞存活率的影响 | 第68-69页 |
| ·BSO,DHA,NAC分别与OTA共同作用活性氧清除酶的影响 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-71页 |
| 第五章 锌离子缓解OTA致HepG2细胞毒性的蛋白组学研究 | 第71-103页 |
| ·材料、试剂及设备 | 第71-73页 |
| ·试验材料 | 第71页 |
| ·主要试剂 | 第71-72页 |
| ·主要仪器设备 | 第72-73页 |
| ·实验方法 | 第73-79页 |
| ·细胞培养 | 第73页 |
| ·CCK-8法测定细胞活力 | 第73页 |
| ·细胞总蛋白提取 | 第73-74页 |
| ·蛋白定量 | 第74页 |
| ·双向电泳 | 第74-76页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第76页 |
| ·RNA提取 | 第76-77页 |
| ·RNA反转录 | 第77-78页 |
| ·荧光定量PCR | 第78-79页 |
| ·数据处理 | 第79页 |
| ·结果与分析 | 第79-92页 |
| ·细胞存活率实验 | 第79-80页 |
| ·总蛋白表达谱分析 | 第80-89页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第89页 |
| ·qRT-PCR分析 | 第89-92页 |
| ·讨论 | 第92-96页 |
| ·锌离子使得细胞内代谢及调节过程发生变化 | 第92-94页 |
| ·OTA处理导致细胞生命活动发生改变 | 第94-95页 |
| ·锌离子具有缓解OTA毒性作用 | 第95-96页 |
| ·内质网应激参与锌离子缓解OTA毒性作用过程 | 第96页 |
| ·小结 | 第96-103页 |
| 第六章 全文总结及展望 | 第103-105页 |
| ·全文总结 | 第103-104页 |
| ·本文创新点 | 第104页 |
| ·展望 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-114页 |
| 致谢 | 第114-116页 |
| 个人简介 | 第116-117页 |
