| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-28页 |
| 1.1 多糖简介 | 第11-12页 |
| 1.2 微生物多糖的研究概况 | 第12-15页 |
| 1.2.1 微生物多糖的分类 | 第12页 |
| 1.2.2 微生物多糖的应用研究 | 第12-14页 |
| 1.2.3 海洋微生物多糖的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 碳源对胞外多糖的影响 | 第15-16页 |
| 1.4 胞外多糖的分离纯化和结构分析 | 第16-19页 |
| 1.4.1 胞外多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.4.2 多糖的结构分析 | 第17-19页 |
| 1.5 微生物胞外多糖的物化活性 | 第19-23页 |
| 1.5.1 流变性 | 第19-20页 |
| 1.5.2 乳化性 | 第20-21页 |
| 1.5.3 絮凝性 | 第21-22页 |
| 1.5.4 抗氧化活性 | 第22-23页 |
| 1.6 多糖的构效关系 | 第23-27页 |
| 1.6.1 单糖组成 | 第23-24页 |
| 1.6.2 糖苷键类型 | 第24页 |
| 1.6.3 溶解度和粘度 | 第24-25页 |
| 1.6.4 取代基 | 第25页 |
| 1.6.5 分子量 | 第25-26页 |
| 1.6.6 核心寡糖片段 | 第26页 |
| 1.6.7 高级结构 | 第26-27页 |
| 1.7 海洋微生物胞外多糖的发展现状及未来展望 | 第27页 |
| 1.8 本课题的研究意义及主要内容 | 第27-28页 |
| 第二章 材料与方法 | 第28-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2 主要试剂与药品 | 第28-30页 |
| 2.3 主要仪器 | 第30-31页 |
| 2.4 试验方法 | 第31-42页 |
| 2.4.1 培养基 | 第31页 |
| 2.4.2 胞外多糖的制备 | 第31-32页 |
| 2.4.3 多糖的定性分析 | 第32页 |
| 2.4.4 多糖的定量分析 | 第32-35页 |
| 2.4.5 胞外多糖的分离纯化 | 第35-36页 |
| 2.4.6 不同碳源胞外多糖的结构研究 | 第36-37页 |
| 2.4.7 不同碳源胞外多糖抗氧化活性的研究 | 第37-39页 |
| 2.4.8 不同碳源胞外多糖物理性质的研究 | 第39-40页 |
| 2.4.9 统计学方法 | 第40-42页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第42-62页 |
| 3.1 不同碳源EPS的定性分析 | 第42页 |
| 3.2 不同碳源对EPS合成量及理化性质的影响 | 第42-43页 |
| 3.3 多糖的纯化 | 第43-45页 |
| 3.3.1 DEAE-52纤维素柱层析 | 第43页 |
| 3.3.2 胞外多糖的Sephadex G-100葡聚糖凝胶柱层析 | 第43-45页 |
| 3.4 多糖的结构分析 | 第45-53页 |
| 3.4.1 紫外光谱分析 | 第45-46页 |
| 3.4.2 红外光谱分析 | 第46页 |
| 3.4.3 多糖的纯度鉴定和相对分子量分布测定 | 第46-48页 |
| 3.4.4 单糖组成及摩尔比 | 第48-51页 |
| 3.4.5 扫描电镜(SEM) | 第51-53页 |
| 3.5 不同碳源EPS对抗氧化性的影响 | 第53-55页 |
| 3.5.1 还原力的测定 | 第53页 |
| 3.5.2 多糖对DPPH自由基的清除作用 | 第53-54页 |
| 3.5.3 多糖对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第54-55页 |
| 3.5.4 多糖对超氧阴离子自由基(·O_2~-)的清除作用 | 第55页 |
| 3.6 胞外多糖的物理性质 | 第55-62页 |
| 第四章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |