| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-25页 |
| 1.1 抗生素概述 | 第9-14页 |
| 1.1.1 抗生素及滥用 | 第9-11页 |
| 1.1.2 抗生素的残留与危害 | 第11-12页 |
| 1.1.3 抗生素的分离/分析现状 | 第12-14页 |
| 1.2 分散液-液微萃取（DLLME）技术 | 第14-19页 |
| 1.2.1 DLLME机理 | 第14-16页 |
| 1.2.2 DLLME在分析化学中的应用 | 第16-18页 |
| 1.2.3 分散液液微萃取发展趋势 | 第18-19页 |
| 1.3 盐析（SO）技术 | 第19-21页 |
| 1.3.1 SO技术应用于萃取分离的机理 | 第19-20页 |
| 1.3.2 SO技术在萃取分离中的应用 | 第20-21页 |
| 1.4 离子液体（IL）概述 | 第21-24页 |
| 1.4.1 离子液体的发展及其特性 | 第21-22页 |
| 1.4.2 离子液体在萃取分离方面的应用 | 第22-24页 |
| 1.5 本文研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 DLLME对三种TCs及其代谢物的萃取模式的选择 | 第25-47页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-29页 |
| 2.2.1 实验仪器、试剂及材料 | 第25-26页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2.2.3 色谱条件 | 第27-28页 |
| 2.2.4 DLLME萃取操作步骤 | 第28-29页 |
| 2.3 DLLME技术用于三种TCs及其代谢物的萃取研究 | 第29-45页 |
| 2.3.1 IL-DLLME对三种TCs及其代谢物萃取条件选择 | 第29-39页 |
| 2.3.1.1 IL-DLLME对三种TCs萃取条件选择 | 第29-34页 |
| 2.3.1.2 IL-DLLME对三种TCs代谢物的萃取条件选择 | 第34-39页 |
| 2.3.2 SO-DLLME法对三种TCs及代谢物萃取条件选择 | 第39-45页 |
| 2.3.2.1 SO-DLLME法对三种TCs萃取条件选择 | 第39-42页 |
| 2.3.2.2 SO-DLLME对三种TCs代谢物的萃取条件优化 | 第42-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-47页 |
| 第三章 猪肉组织中三种TCs及其代谢物残留量的检测及其迁移情况研究 | 第47-55页 |
| 3.1 前言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48页 |
| 3.2.1 仪器、试剂与材料 | 第48页 |
| 3.2.2 标准储备液和标准溶液的配制 | 第48页 |
| 3.2.3 液相色谱条件 | 第48页 |
| 3.2.4 微萃取操作步骤 | 第48页 |
| 3.2.5 样品溶液的配制 | 第48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-53页 |
| 3.3.1 方法线性范围、回收率、精密度及检测限 | 第48-50页 |
| 3.3.2 样品中三种TCs的定量检测及迁移研究 | 第50-53页 |
| 3.4 小结 | 第53-55页 |
| 第四章 猪肾中三种TCs在不同储存条件下的降解性研究 | 第55-63页 |
| 4.1 前言 | 第55页 |
| 4.2 实验部分 | 第55-58页 |
| 4.2.1 仪器、材料与试剂 | 第55-56页 |
| 4.2.2 溶液的配制 | 第56页 |
| 4.2.3 样品处理 | 第56-57页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-62页 |
| 4.3.1 标准曲线、精密度及检测限 | 第58页 |
| 4.3.2 三种抗生素的降解性研究 | 第58-62页 |
| 4.4 小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-67页 |
| 5.1 结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 附录：硕士期间论文发表情况 | 第79页 |
