| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 引言 | 第10-20页 |
| ·汾酒大曲糖化酶的研究 | 第10-14页 |
| ·糖化酶的结构组成及分类 | 第10-11页 |
| ·糖化酶的特性 | 第11-12页 |
| ·糖化酶的热稳定性和 pH 稳定性 | 第11页 |
| ·糖化酶的底物特异性 | 第11-12页 |
| ·双水相萃取技术 | 第12-14页 |
| ·双水相体系萃取原理 | 第12-13页 |
| ·影响双水相体系中物质分配的因素 | 第13-14页 |
| ·汾酒大曲蛋白组学与宏蛋白质组学的研究 | 第14-18页 |
| ·蛋白质组学的研究 | 第14-17页 |
| ·蛋白质组学的研究领域 | 第15页 |
| ·蛋白质组学的分离技术 | 第15-16页 |
| ·蛋白组学的鉴定技术 | 第16-17页 |
| ·生物信息学 | 第17页 |
| ·宏蛋白质组学的研究 | 第17-18页 |
| ·本研究的目的意义和主要内容 | 第18-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-29页 |
| ·材料 | 第20-21页 |
| ·原材料 | 第20-21页 |
| ·试剂 | 第21页 |
| ·主要设备 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-29页 |
| ·大曲蛋白样品的提取 | 第21-22页 |
| ·糖化酶的萃取 | 第22-24页 |
| ·糖化酶活力的测定 | 第22页 |
| ·PEG/(NH_4)_2SO_4体系双节线图 | 第22页 |
| ·双水相体系的制备 | 第22页 |
| ·PEG 分子量及浓度对糖化酶分配行为的影响 | 第22-23页 |
| ·其它因素对糖化酶分配行为的影响 | 第23页 |
| ·Starch-PAGE 电泳分析大曲糖化酶活力 | 第23-24页 |
| ·大曲宏蛋白组的研究 | 第24-25页 |
| ·主要试剂的配制 | 第24-25页 |
| ·蛋白样品的沉淀 | 第25页 |
| ·蛋白溶解方法 | 第25页 |
| ·蛋白定量（Bradford 法） | 第25-26页 |
| ·标准曲线绘制 | 第25-26页 |
| ·样品浓度测定 | 第26页 |
| ·双向电泳过程 | 第26-28页 |
| ·等电聚焦电泳 IEF | 第26-27页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第27-28页 |
| ·CBB G-250 染色 | 第28页 |
| ·扫描及图形分析 | 第28页 |
| ·蛋白质胶内酶解和质谱鉴定 | 第28-29页 |
| ·主要试剂的配制 | 第28-29页 |
| ·蛋白质胶内酶解 | 第29页 |
| ·LC-MS/MS 检测及数据处理 | 第29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-48页 |
| ·双水相萃取糖化酶效果 | 第29-35页 |
| ·淀粉标准曲线的绘制 | 第29-30页 |
| ·PEG/(NH_4)_2SO_4双水相体系相图 | 第30-31页 |
| ·PEG 分子量对糖化酶的影响 | 第31页 |
| ·不同浓度 PEG 对糖化酶萃取的影响 | 第31-32页 |
| ·(NH_4)_2SO_4、pH、NaCl 浓度对糖化酶分配行为的影响 | 第32-33页 |
| ·正交实验 | 第33-34页 |
| ·Starch-PAGE 电泳分析双水相萃取前后糖化酶的活力 | 第34-35页 |
| ·汾酒大曲宏蛋白组学的研究 | 第35-48页 |
| ·蛋白质定量标准曲线的绘制 | 第35页 |
| ·不同制备方法对双向电泳结果的影响 | 第35-37页 |
| ·上样量对双向电泳的影响 | 第37页 |
| ·蛋白的溶解 | 第37-38页 |
| ·不同长度 IPG 胶条的比较 | 第38页 |
| ·汾酒大曲宏蛋白组的质谱鉴定 | 第38-45页 |
| ·汾酒大曲中蛋白质功能分析 | 第45-46页 |
| ·汾酒大曲中功能菌分析 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |