双孢菇多糖提取和分离纯化的研究
| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-20页 |
| ·真菌多糖简介 | 第12-16页 |
| ·真菌多糖概述 | 第12页 |
| ·真菌多糖的营养保健功能 | 第12-14页 |
| ·真菌多糖的提取分离 | 第14-15页 |
| ·真菌多糖的开发利用现状与展望 | 第15-16页 |
| ·双孢菇多糖 | 第16-18页 |
| ·双孢菇资源 | 第16-17页 |
| ·双孢菇及其多糖的营养保健功能 | 第17-18页 |
| ·本课题的主要研究内容 | 第18-20页 |
| ·双孢菇粗多糖的提取 | 第18页 |
| ·双孢菇多糖的分离纯化 | 第18-20页 |
| 第2章 双孢菇多糖的提取 | 第20-36页 |
| ·引言 | 第20页 |
| ·实验材料与设备 | 第20-21页 |
| ·主要实验材料 | 第20页 |
| ·仪器与设备 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21页 |
| ·双孢菇理化分析 | 第21页 |
| ·双孢菇多糖提取及纯化工艺 | 第21页 |
| ·实验操作要点 | 第21-25页 |
| ·标准曲线的制备 | 第21-22页 |
| ·双孢菇预处理 | 第22页 |
| ·超声波单因素实验 | 第22-23页 |
| ·纤维素酶影响因素的选择 | 第23-24页 |
| ·蛋白酶的正交试验 | 第24-25页 |
| ·结果与分析 | 第25-34页 |
| ·水分含量 | 第25页 |
| ·多糖最大吸收波长的紫外扫描 | 第25页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第25-26页 |
| ·超声波单因素分析 | 第26-30页 |
| ·纤维素酶实验结果及分析 | 第30-33页 |
| ·蛋白酶正交试验结果及分析 | 第33-34页 |
| ·本章小结 | 第34-36页 |
| 第3章 双孢菇多糖的初步分离纯化 | 第36-44页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·实验材料 | 第36-37页 |
| ·主要实验材料 | 第36-37页 |
| ·仪器与设备 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·活性炭脱色的影响因素 | 第37-38页 |
| ·Sevag法脱蛋白 | 第38页 |
| ·实验结果与分析 | 第38-43页 |
| ·脱色温度与脱色性能的关系 | 第38-39页 |
| ·脱色时间对脱色性能的影响 | 第39-40页 |
| ·活性炭用量对脱色性能的影响 | 第40页 |
| ·pH值与脱色性能的关系 | 第40-41页 |
| ·活性炭脱色的正交试验结果与分析 | 第41-43页 |
| ·紫外全波长扫描结果 | 第43页 |
| ·本章小结 | 第43-44页 |
| 第4章 双孢菇多糖的分离纯化 | 第44-52页 |
| ·引言 | 第44页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·主要实验材料 | 第44页 |
| ·仪器与设备 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·醇沉作用对多糖得率的影响 | 第45页 |
| ·离子交换层析 | 第45-46页 |
| ·Sephadex G-100分离纯化 | 第46-47页 |
| ·多糖理化性质测定 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-50页 |
| ·醇沉效果 | 第47-48页 |
| ·DEAE-52分离纯化结果 | 第48页 |
| ·Sephadex G-100柱层析结果 | 第48-49页 |
| ·多糖理化性质 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-52页 |
| 第5章 结论及展望 | 第52-54页 |
| ·实验结果分析 | 第52-53页 |
| ·双孢菇粗多糖的提取 | 第52页 |
| ·双孢菇多糖的初步分离纯化 | 第52页 |
| ·双孢菇多糖的分离纯化 | 第52-53页 |
| ·展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 致谢 | 第58-60页 |
| 在学期间主要科研成果 | 第60页 |
