| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-48页 |
| ·蜂胶简介 | 第14页 |
| ·蜂胶主要化学成分 | 第14-18页 |
| ·蜂胶中的黄酮类化合物 | 第15-17页 |
| ·蜂胶中的酚酸及其酯类化合物 | 第17-18页 |
| ·蜂胶中其它类物质 | 第18页 |
| ·ALPHA-葡萄糖苷酶抑制剂 | 第18-21页 |
| ·Alpha-葡萄糖苷酶的简介 | 第18-19页 |
| ·Alpha-葡萄糖苷酶抑制剂作用的机理 | 第19页 |
| ·Alpha-葡萄糖苷酶抑制剂的种类 | 第19-21页 |
| ·化学合成抑制剂 | 第19-20页 |
| ·天然产物抑制剂 | 第20-21页 |
| ·末端糖基化产物抑制剂 | 第21-33页 |
| ·末端糖基化产物简介 | 第21页 |
| ·末端糖基化产物的形成 | 第21-26页 |
| ·传统形成途径 | 第22-23页 |
| ·非传统形成途径—自动氧化糖基化 | 第23-26页 |
| ·末端糖基化产物病理学危害 | 第26-27页 |
| ·抑制末端糖基化产物的可能机理 | 第27-28页 |
| ·末端糖基化产物的抑制 | 第28-32页 |
| ·机体的自我修复 | 第28页 |
| ·化学药物抑制 | 第28-30页 |
| ·植物提取物抑制剂 | 第30页 |
| ·微生物类抑制剂 | 第30-31页 |
| ·发酵产物抑制剂 | 第31页 |
| ·食物中活性物质抑制剂 | 第31-32页 |
| ·末端糖基化产物的检测 | 第32-33页 |
| ·本论文的立题背景与研究内容 | 第33-36页 |
| ·立题背景和意义 | 第33-35页 |
| ·研究内容 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-48页 |
| 第二章 北方部分地区蜂胶提取物的成分分析 | 第48-78页 |
| ·材料与设备 | 第48-50页 |
| ·材料与试剂 | 第48-49页 |
| ·仪器与设备 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-53页 |
| ·蜂胶提取物的制备 | 第50页 |
| ·标准对照品溶液配置 | 第50-51页 |
| ·样品中总多酚含量的测定 | 第51页 |
| ·样品中总黄酮含量的测定 | 第51页 |
| ·HPLC的分析条件 | 第51页 |
| ·线性关系考察 | 第51-52页 |
| ·精密度、稳定性和重复性实验 | 第52页 |
| ·样品中成份的初步定性 | 第52页 |
| ·HPLC-EIS-Q-TOF MS分析 | 第52页 |
| ·样品中各组分的定量 | 第52页 |
| ·加标回收率实验 | 第52页 |
| ·数据处理 | 第52-53页 |
| ·结果与分析 | 第53-72页 |
| ·总多酚和总黄酮标准曲线的绘制 | 第53页 |
| ·不同地区的蜂胶提取物中的总多酚和总黄酮含量 | 第53-55页 |
| ·液相条件的确定 | 第55页 |
| ·标准品混合 | 第55-56页 |
| ·精密度、稳定性和重复性实验 | 第56页 |
| ·线性关系 | 第56-58页 |
| ·中国北部地区的蜂胶液相图谱分析 | 第58-59页 |
| ·添加回收率考察 | 第59-62页 |
| ·不同地区蜂胶的HPLC聚类分析 | 第62页 |
| ·蜂胶提取物的HPLC-ESI-Q-TOF MS | 第62-72页 |
| ·本章小结 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 第三章 蜂胶提取分离物对ALPHA-糖苷酶的抑制作用 | 第78-110页 |
| ·材料与设备 | 第79-80页 |
| ·材料与试剂 | 第79页 |
| ·仪器与设备 | 第79-80页 |
| ·实验方法 | 第80-84页 |
| ·蜂胶提取物的制备 | 第80页 |
| ·HPLC的分析条件 | 第80页 |
| ·树脂的筛选 | 第80-81页 |
| ·上样浓度的确定 | 第81页 |
| ·上样速度的确定 | 第81页 |
| ·洗脱曲线确定 | 第81页 |
| ·吸附动力学实验 | 第81页 |
| ·树脂使用次数对分离效果的影响 | 第81-82页 |
| ·分离物的制备及其成分的分析 | 第82页 |
| ·总多酚含量的测定 | 第82页 |
| ·样品中总黄酮含量的测定 | 第82页 |
| ·α-葡萄糖苷酶活力的测定 | 第82页 |
| ·α-葡萄糖苷酶抑制率的测定 | 第82-83页 |
| ·小鼠肠道蔗糖酶的抑制作用 | 第83页 |
| ·小鼠肠道麦芽糖酶的抑制作用 | 第83页 |
| ·α-葡萄糖苷酶抑制动力学 | 第83-84页 |
| ·抑制常数的确定 | 第84页 |
| ·结果与分析 | 第84-102页 |
| ·树脂的筛选 | 第84-85页 |
| ·上样浓度的确定 | 第85-86页 |
| ·上样速度的确定 | 第86页 |
| ·洗脱曲线 | 第86-87页 |
| ·吸附动力学实验 | 第87-88页 |
| ·树脂使用次数对洗脱效果的影响 | 第88页 |
| ·不同乙醇水溶剂对组分的影响及其成分的分析 | 第88-93页 |
| ·总多酚和总黄酮含量 | 第93-95页 |
| ·蜂胶不同提取分离物对α-糖苷酶的抑制作用 | 第95-97页 |
| ·酶抑制动力学 | 第97-102页 |
| ·本章小结 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-110页 |
| 第四章 蜂胶提取分离物与ALPHA-糖苷酶的相互作用 | 第110-130页 |
| ·材料与设备 | 第111页 |
| ·材料与试剂 | 第111页 |
| ·仪器与设备 | 第111页 |
| ·实验方法 | 第111-112页 |
| ·α-糖苷酶的荧光实验 | 第111页 |
| ·α-糖苷酶紫外光光谱实验 | 第111-112页 |
| ·等温滴定微量热测定实验 | 第112页 |
| ·结果与分析 | 第112-126页 |
| ·α-糖苷酶溶液的激发波和发射波的确定 | 第112-113页 |
| ·不同提取分离物对酶的荧光猝灭光谱 | 第113-114页 |
| ·不同提取分离物对α-糖苷酶的荧光猝灭机理 | 第114-119页 |
| ·不同提取分离物与酶的紫外吸收光谱 | 第119-121页 |
| ·不同提取分离物与酶的三维荧光光谱 | 第121-124页 |
| ·等温滴定微量热仪测定分离物与α-糖苷酶的结合作用 | 第124-126页 |
| ·本章小结 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-130页 |
| 第五章 蜂胶提取分离物对末端糖基化产物的抑制作用 | 第130-160页 |
| ·材料与设备 | 第131-132页 |
| ·材料与试剂 | 第131-132页 |
| ·仪器与设备 | 第132页 |
| ·实验方法 | 第132-134页 |
| ·不同提取分离物清除糖类自动氧化产生的羟自由基能力 | 第132页 |
| ·不同提取分离物对BSA-Glucose模型中的末端糖基化产物的抑制 | 第132-133页 |
| ·蜂胶不同提取分离物对CML的抑制率 | 第133页 |
| ·蜂胶不同提取分离物对BSA-MGO模型中总末端糖基化产物的抑制 | 第133页 |
| ·蜂胶不同提取分离物对末端糖基化产物—Amadori的抑制 | 第133-134页 |
| ·蛋白羰基含量的测定 | 第134页 |
| ·蛋白硫醇含量的测定 | 第134页 |
| ·分析蛋白质结构变化 | 第134页 |
| ·利用SDS-PAGE分析蛋白结构 | 第134页 |
| ·结果与分析 | 第134-152页 |
| ·蜂胶不同提取分离物对葡萄自动氧化羟自由基的抑制作用 | 第134-136页 |
| ·不同提取分离物对总末端糖基化产物的抑制作用 | 第136-138页 |
| ·不同提取分离物对pentosidine和CML的抑制 | 第138-140页 |
| ·不同提取分离物对BSA-MGO中总末端糖基化产物的抑制作用 | 第140-142页 |
| ·不同提取分离物对Amadori产物的抑制作用 | 第142-143页 |
| ·不同提取分离物对蛋白质氧化修饰的抑制作用 | 第143-144页 |
| ·蛋白结构变化的分析 | 第144-151页 |
| ·蛋白质中色氨酸的荧光变化 | 第144-146页 |
| ·BSA-MGO模型中的牛血清白蛋白结构的三维荧光光谱分析 | 第146-151页 |
| ·SDS-SPAG对蛋白质结构的分析 | 第151-152页 |
| ·本章小结 | 第152-154页 |
| 参考文献 | 第154-160页 |
| 全文结论 | 第160-162页 |
| 致谢 | 第162-164页 |
| 硕士期间发表论文情况 | 第164页 |
