| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1 南瓜及其应用价值 | 第10-19页 |
| 1.1 概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 研究意义 | 第10页 |
| 1.1.2 食用价值 | 第10-11页 |
| 1.1.3 药用价值 | 第11页 |
| 1.1.4 南瓜多糖的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2 南瓜多糖的理化性质和生理功能 | 第12-14页 |
| 1.2.1 南瓜多糖的性状 | 第12页 |
| 1.2.2 南瓜多糖的生理功能 | 第12-14页 |
| 1.3 多糖的提取方法 | 第14-16页 |
| 1.3.1 热水浸提法 | 第14页 |
| 1.3.2 超声波辅助提取法 | 第14页 |
| 1.3.3 微波辅助提取 | 第14-15页 |
| 1.3.4 碱法提取 | 第15页 |
| 1.3.5 酶法提取多糖类化合物 | 第15-16页 |
| 1.4 多糖的的纯化 | 第16-17页 |
| 1.4.1 聚酰胺柱层析法 | 第16页 |
| 1.4.2 硅胶柱层析法 | 第16页 |
| 1.4.3 大孔树脂吸附法 | 第16-17页 |
| 1.5 多糖结构鉴定 | 第17-18页 |
| 1.5.1 物理方法 | 第17页 |
| 1.5.2 化学方法 | 第17页 |
| 1.5.3 生物学方法 | 第17-18页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 南瓜多糖的提取工艺研究 | 第19-33页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第19页 |
| 1.1 实验材料 | 第19页 |
| 1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.1 标准曲线绘制 | 第19-20页 |
| 2.2 酶法提取法提取南瓜多糖的研究 | 第20-21页 |
| 2.2.1 不同酶浓度对南瓜多糖提取率的影响 | 第20页 |
| 2.2.2 不同提取时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第20-21页 |
| 2.2.3 不同提取温度对南瓜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.2.4 不同p H值对南瓜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.2.5 酶法提取南瓜多糖正交实验 | 第21页 |
| 2.3 热水提取法提取南瓜多糖的研究 | 第21-22页 |
| 2.3.1 料液比比对南瓜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.3.2 提取时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.3.3 提取温度对南瓜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.3.4 提取次数对南瓜多糖提取率的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.5 热水提取法提取南瓜多糖正交实验 | 第22页 |
| 2.4 超声波辅助提取法提取南瓜多糖的研究 | 第22页 |
| 2.4.1 超声频率对南瓜多糖提取率的影响 | 第22页 |
| 2.4.2 超声波作用时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第22页 |
| 2.4.3 料液比对南瓜多糖提取率的影响 | 第22页 |
| 2.4.4 pH值对南瓜多糖提取率的影响 | 第22页 |
| 2.4.5 超声波辅助提取法提取南瓜多糖正交实验 | 第22页 |
| 2.5 数据处理 | 第22页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第22-31页 |
| 3.1 酶法提取南瓜多糖的研究 | 第22-25页 |
| 3.1.1 不同提取酶浓度对南瓜多糖提取率的影响 | 第22-23页 |
| 3.1.2 不同提取时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第23页 |
| 3.1.3 不同提取温度对南瓜多糖提取率的影响 | 第23-24页 |
| 3.1.4 不同提取p H值对南瓜多糖提取率的影响 | 第24页 |
| 3.1.5 酶法提南瓜多糖正交实验 | 第24-25页 |
| 3.2 热水提取法提取南瓜多糖的研究 | 第25-28页 |
| 3.2.1 不同提取固液比对南瓜多糖提取率的影响 | 第25-26页 |
| 3.2.2 不同提取时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第26页 |
| 3.2.3 不同提取温度对南瓜多糖提取率的影响 | 第26-27页 |
| 3.2.4 不同提取次数对南瓜多糖提取率的影响 | 第27页 |
| 3.2.5 热水提取法提取南瓜多糖的正交实验 | 第27-28页 |
| 3.3 超声波辅助提取法提取南瓜多糖的研究 | 第28-31页 |
| 3.3.1 超声频率对南瓜多糖提取率的影响 | 第28-29页 |
| 3.3.2 提取时间对南瓜多糖提取率的影响 | 第29页 |
| 3.3.3 提取料液比对南瓜多糖提取率的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.4 溶液pH值对南瓜多糖提取率的影响 | 第30页 |
| 3.3.5 超声波提取法提取南瓜多糖的正交实验 | 第30-31页 |
| 4 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 南瓜多糖的纯化研究 | 第33-41页 |
| 1 材料和方法 | 第33-36页 |
| 1.1 实验材料和试剂 | 第33页 |
| 1.2 实验仪器 | 第33页 |
| 1.3 试验方法 | 第33-36页 |
| 1.3.1 大孔树脂的预处理 | 第33页 |
| 1.3.2 南瓜多糖提取液样品的制备 | 第33-34页 |
| 1.3.3 静态吸附 | 第34-35页 |
| 1.3.4 动态吸附 | 第35-36页 |
| 1.3.5 静态吸附与动态吸附结果比较 | 第36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 2.1 静态吸附 | 第36-38页 |
| 2.1.1 大孔树脂的选择 | 第36-37页 |
| 2.1.2 静态吸附单因素实验 | 第37-38页 |
| 2.2 动态吸附 | 第38-40页 |
| 2.2.1 动态吸附及解析单因素实验 | 第38-39页 |
| 2.2.2 动态吸附解析动力学曲线 | 第39-40页 |
| 2.3 静态吸附与动态吸附比较 | 第40页 |
| 3 结果与讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 南瓜多糖的分离及初步结构表征研究 | 第41-46页 |
| 1 材料和方法 | 第41-42页 |
| 1.1 实验材料和试剂 | 第41页 |
| 1.2 实验仪器 | 第41页 |
| 1.3 南瓜多糖脱蛋白 | 第41页 |
| 1.4 南瓜多糖的分离 | 第41-42页 |
| 1.5 紫外光谱测定 | 第42页 |
| 1.6 红外光谱测定 | 第42页 |
| 2 结果分析 | 第42-46页 |
| 2.1 DEAE层析柱洗脱分析 | 第42-43页 |
| 2.2 G-100层析柱洗脱分析 | 第43页 |
| 2.3 光谱分析结果 | 第43-45页 |
| 2.3.1 紫外光谱分析 | 第43-44页 |
| 2.3.2 红外光谱分析 | 第44-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-46页 |
| 第五章 全文总结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 致谢 | 第51-53页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第53-55页 |
| 附件 | 第55页 |