| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 选题依据和意义 | 第13-14页 |
| 1.2 共轭亚油酸的概述 | 第14页 |
| 1.3 共轭亚油酸的生理功能 | 第14-16页 |
| 1.3.1 抗癌作用 | 第15页 |
| 1.3.2 减肥作用 | 第15页 |
| 1.3.3 抗糖尿病作用 | 第15-16页 |
| 1.3.4 降血压作用 | 第16页 |
| 1.3.5 增强免疫力 | 第16页 |
| 1.4 共轭亚油酸的天然来源 | 第16-17页 |
| 1.5 共轭亚油酸的人工合成方法 | 第17-21页 |
| 1.5.1 化学合成法 | 第17-18页 |
| 1.5.2 生物合成法 | 第18-21页 |
| 1.6 共轭亚油酸的检测方法 | 第21-23页 |
| 1.6.1 紫外检测法 | 第21页 |
| 1.6.2 气相色谱法 | 第21页 |
| 1.6.3 银离子高效液相色谱法 | 第21-22页 |
| 1.6.4 气质联用法 | 第22页 |
| 1.6.5 胶束电动毛细管色谱检测法 | 第22页 |
| 1.6.6 红外光谱检测法 | 第22-23页 |
| 1.7 细胞固定化技术的研究 | 第23-24页 |
| 1.8 研究内容与创新点 | 第24-27页 |
| 1.8.1 研究内容 | 第24-25页 |
| 1.8.2 本课题技术路线 | 第25页 |
| 1.8.3 本课题创新点 | 第25-27页 |
| 第2章 菜油脚料提取油脂工艺的研究 | 第27-35页 |
| 2.1 试验材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-31页 |
| 2.2.1 利用不同方法提取菜油脚料中的中性油 | 第28-29页 |
| 2.2.2 不同方法提取油脂的质量分析 | 第29-31页 |
| 2.2.3 气相检测分析菜油脚料提取油脂的组分 | 第31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-33页 |
| 2.3.1 不同方法提油率的比较 | 第31-32页 |
| 2.3.2 不同方法提取油脂质量的比较 | 第32页 |
| 2.3.3 菜油脚料和提取的油脂的图片比较 | 第32-33页 |
| 2.3.4 提取油脂的气相检测色谱图 | 第33页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第33-35页 |
| 第3章 脂肪酶酶解菜油脚料提取油脂工艺条件的优化 | 第35-49页 |
| 3.1 试验材料 | 第35-36页 |
| 3.1.1 试验菌种 | 第35页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第36页 |
| 3.2 试验方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 提取油脂的乳化液制备 | 第36页 |
| 3.2.2 脂肪酶水解提取油脂的方法及水解率的测定 | 第36-37页 |
| 3.2.3 黑曲霉脂肪酶水解提取油脂条件的优化 | 第37-39页 |
| 3.2.4 响应面法优化酶水解提取油脂工艺条件 | 第39页 |
| 3.2.5 嗜酸乳杆菌转化提取油脂酶解液和未被酶解的提取油脂产 CLA 的比较 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-47页 |
| 3.3.1 温度对脂肪酶水解油脂的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.2 pH 值对脂肪酶水解油脂的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.3 底物浓度对脂肪酶水解油脂的影响 | 第41页 |
| 3.3.4 脂肪酶添加量对酶水解油脂的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.5 脂肪酶解时间对酶水解油脂的影响 | 第42页 |
| 3.3.6 不同振荡转数对脂肪酶水解油脂的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.7 脂肪酶加入方式对酶水解油脂的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.8 响应面法优化脂肪酶水解提取油脂的工艺条件 | 第44-47页 |
| 3.3.9 嗜酸乳杆菌转化提取油脂酶解液和未酶解提取油脂产 CLA 的比较 | 第47页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第47-49页 |
| 第4章 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌转化菜油脚料提取油脂酶解液生成共轭亚油酸的比较研究 | 第49-56页 |
| 4.1 试验材料 | 第49-51页 |
| 4.1.1 试验菌种 | 第49页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第49-50页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第50-51页 |
| 4.1.4 嗜酸乳杆菌 MRS 培养基 | 第51页 |
| 4.1.5 植物乳杆菌 MRS 培养基 | 第51页 |
| 4.2 试验方法 | 第51-53页 |
| 4.2.1 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌生长曲线的绘制 | 第51页 |
| 4.2.2 共轭亚油酸标准曲线的绘制 | 第51-52页 |
| 4.2.3 亚油酸乳化液和提取油脂乳化液的配制 | 第52页 |
| 4.2.4 提取油脂酶解液的制备 | 第52页 |
| 4.2.5 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌的诱导培养及细胞收集 | 第52页 |
| 4.2.6 两种乳杆菌转化生成 CLA 的方法 | 第52页 |
| 4.2.7 嗜酸乳杆菌转化萃取液与提取油脂的紫外光谱图的比较 | 第52-53页 |
| 4.2.8 共轭亚油酸的提取和检测方法 | 第53页 |
| 4.3 结果与分析 | 第53-55页 |
| 4.3.1 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌生长曲线的绘制 | 第53页 |
| 4.3.2 共轭亚油酸标准曲线的绘制 | 第53-54页 |
| 4.3.3 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌转化提取油脂酶解液生成 CLA 的比较 | 第54页 |
| 4.3.4 嗜酸乳杆菌转化萃取液与提取油脂的紫外光谱图的比较 | 第54-55页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第55-56页 |
| 第5章 固定化嗜酸乳杆菌转化菜油脚料提取油脂酶解液生成共轭亚油酸工艺条件的优化 | 第56-72页 |
| 5.1 试验材料 | 第56-58页 |
| 5.1.1 试验菌种 | 第56页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第56-57页 |
| 5.1.3 主要仪器与设备 | 第57-58页 |
| 5.1.4 MRS 培养基 | 第58页 |
| 5.2 试验方法 | 第58-62页 |
| 5.2.1 亚油酸乳化液和提取油脂乳化液的配制（略） | 第58页 |
| 5.2.2 提取油脂酶解液的制备（略） | 第58页 |
| 5.2.3 嗜酸乳杆菌细胞的收集和吸附载体的预处理 | 第58页 |
| 5.2.4 吸附固定化嗜酸乳杆菌及转化生成 CLA 的方法 | 第58-59页 |
| 5.2.5 共轭亚油酸的提取和检测方法 | 第59页 |
| 5.2.6 吸附固定化嗜酸乳杆菌的条件研究 | 第59-60页 |
| 5.2.7 转化条件的优化 | 第60-61页 |
| 5.2.8 响应面法优化固定化嗜酸乳杆菌直接转化工艺条件 | 第61页 |
| 5.2.9 固定化嗜酸乳杆菌多批次连续转化提取油脂酶解液产 CLA 试验 | 第61页 |
| 5.2.10 固定化嗜酸乳杆菌不同批次电镜扫描观察图 | 第61-62页 |
| 5.2.11 固定化嗜酸乳杆菌与游离化嗜酸乳杆菌转化产 CLA 的比较 | 第62页 |
| 5.3 结果与分析 | 第62-70页 |
| 5.3.1 固定化材料直径的大小对嗜酸乳杆菌 CLA 产量的影响 | 第62页 |
| 5.3.2 吸附固定化时间对嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.3 细胞浓度对固定化嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第63页 |
| 5.3.4 转化温度对固定化嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.5 转化 pH 对固定化嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.6 转化时间对固定化嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第65页 |
| 5.3.7 金属离子对固定化嗜酸乳杆菌产 CLA 的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.8 响应面法优化固定化嗜酸乳杆菌直接转化工艺条件 | 第66-68页 |
| 5.3.9 吸附固定化嗜酸乳杆菌与游离化嗜酸乳杆菌转化产 CLA 的比较 | 第68-69页 |
| 5.3.10 固定化嗜酸乳杆菌颗粒多批次连续转化产 CLA 试验 | 第69-70页 |
| 5.3.11 固定化嗜酸乳杆菌颗粒不同批次电镜扫描观察图 | 第70页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第70-72页 |
| 第6章 结论与展望 | 第72-75页 |
| 6.1 结论 | 第72-73页 |
| 6.1.1 菜油脚料油脂提取工艺的研究 | 第72页 |
| 6.1.2 脂肪酶水解提取油脂工艺条件的优化 | 第72页 |
| 6.1.3 植物乳杆菌和嗜酸乳杆菌转化提取油脂酶解液生成共轭亚油酸的比较研究 | 第72-73页 |
| 6.1.4 固定化嗜酸乳杆菌转化提取油脂酶解液生成共轭亚油酸工艺条件的优化 | 第73页 |
| 6.2 展望 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 攻读学位期的研究成果 | 第83页 |
