| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 '海沃德'猕猴桃概述 | 第11页 |
| 1.2 AsA的生物学功能 | 第11-13页 |
| 1.2.1 AsA的抗氧化和逆境抗胁迫作用 | 第12页 |
| 1.2.2 AsA作为酶的辅助因子 | 第12页 |
| 1.2.3 AsA调节果实的生长发育 | 第12-13页 |
| 1.3 AsA的合成代谢途径 | 第13-16页 |
| 1.3.1 AsA的生物合成 | 第13-14页 |
| 1.3.2 AsA的氧化还原及降解过程 | 第14-16页 |
| 1.4 植物AsA生物氧化关键酶的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4.1 抗坏血酸氧化酶的研究 | 第16-17页 |
| 1.4.2 漆酶的研究 | 第17页 |
| 1.5 转录组研究概述 | 第17-19页 |
| 1.5.1 转录组及转录组测序(RNA-Seq) | 第17-18页 |
| 1.5.2 RNA-Seq在果实发育、后熟期生理及贮藏品质研究中的应用 | 第18-19页 |
| 1.6 本研究的目的和意义及内容 | 第19-21页 |
| 1.6.1 本研究的目的意义 | 第19页 |
| 1.6.2 本研究的主要内容 | 第19-21页 |
| 第2章 '海沃德'猕猴桃后熟期转录组测序分析 | 第21-41页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-22页 |
| 2.1.1 '海沃德'猕猴桃果实 | 第21-22页 |
| 2.2 狲猴桃RNA-Seq测序方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 cDNA文库构建和测序 | 第22页 |
| 2.2.2 转录组测序质量评估 | 第22-23页 |
| 2.2.3 参考基因组比对和新转录组预测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 差异剪接基因和差异表达基因检测及SNP分析 | 第24页 |
| 2.2.5 差异表达基因层次聚类分析级GO和Pathway功能分析 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-32页 |
| 2.3.1 Reads质量分析 | 第25页 |
| 2.3.2 RNA-Seq质量分析 | 第25-27页 |
| 2.3.3 不同时期转录本的SNP分析结果 | 第27页 |
| 2.3.4 参考基因组比对和新转录本预测结果 | 第27-28页 |
| 2.3.5 差异表达基因检测结果 | 第28-32页 |
| 2.3.5.1 差异表达的基因统计和GO功能分析 | 第28-31页 |
| 2.3.5.2 差异基因的pathway功能分析 | 第31-32页 |
| 2.4 '海沃德'果实后熟期五大激素通路的差异表达基因 | 第32-39页 |
| 2.4.1 '海沃德'果实后熟期ABA差异表达基因的分析 | 第33-34页 |
| 2.4.2 '海沃德'果实后熟期GB差异表达基因的分析 | 第34-35页 |
| 2.4.3 '海沃德'果实后熟期CK差异表达基因的分析 | 第35-36页 |
| 2.4.4 '海沃德'果实后熟期AUX差异表达基因的分析 | 第36-37页 |
| 2.4.5 '海沃德'果实后熟期ET差异表达基因的分析 | 第37-39页 |
| 2.5 小结 | 第39-41页 |
| 第3章 '海沃德,猕猴桃后熟期AsA降解通路相关基因的表达及进化分析 | 第41-55页 |
| 3.1 材料与方法 | 第41-42页 |
| 3.1.1 转录组数据 | 第41页 |
| 3.1.2 AsA降解通路相关基因表达差异分析 | 第41页 |
| 3.1.3 AsA通路差异表达基因分析 | 第41-42页 |
| 3.2 结果与分析 | 第42-52页 |
| 3.2.1 '海沃德'后熟期AsA降解通路相关基因差异表达分析 | 第42-49页 |
| 3.2.2 AsA降解关键基因进化分析 | 第49-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-53页 |
| 3.4 小结 | 第53-55页 |
| 第4章 '海沃德'猕猴桃后熟期AsA降解通路关键基因表达差异的验证 | 第55-65页 |
| 4.1 材料与设备 | 第55-56页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第55页 |
| 4.1.2 试验试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.3 试验设备与仪器 | 第56页 |
| 4.2 试验方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 '海沃德'猕猴桃果实后熟期总RNA的提取和cDNA的合成 | 第56页 |
| 4.2.2 定量引物设计与检测 | 第56-57页 |
| 4.2.3 荧光定量PCR检测 | 第57-58页 |
| 4.2.4 溶解曲线分析 | 第58页 |
| 4.3 结果与分析 | 第58-62页 |
| 4.3.1 '海沃德'猕猴桃后熟期RNA质量及浓度检测 | 第58-59页 |
| 4.3.2 候选基因的引物特异性 | 第59-60页 |
| 4.3.3 '海沃德'猕猴桃果实后熟期AsA降解候选基因表达差异 | 第60-62页 |
| 4.4 讨论 | 第62-63页 |
| 4.4.1 '海沃德'猕猴桃果实后熟期AO基因差异表达分析 | 第62-63页 |
| 4.4.2 '海沃德'猕猴桃果实后熟期Laccase基因差异表达分析 | 第63页 |
| 4.5 小结 | 第63-65页 |
| 第5章 '海沃德'猕猴桃后熟期AsA含量及AO、Laccase酶活变化 | 第65-73页 |
| 5.1 材料与设备 | 第65-66页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第65页 |
| 5.1.2 试验试剂 | 第65页 |
| 5.1.3 试验设备与仪器 | 第65-66页 |
| 5.2 试验方法 | 第66-69页 |
| 5.2.1 '海沃德'猕猴桃果实后熟期AsA含量测定 | 第66-67页 |
| 5.2.2 '海沃德'猕猴桃果实后熟期AO活性测定 | 第67-68页 |
| 5.2.3 '海沃德'猕猴桃果实后熟期Laccase活性测定 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与分析 | 第69-71页 |
| 5.3.1 '海沃德'猕猴桃果实后熟期T-AsA、AsA和DHA含量变化 | 第69页 |
| 5.3.2 '海沃德'猕猴桃后熟期AO酶活性的变化 | 第69-70页 |
| 5.3.3 '海沃德'猕猴桃果实后熟期Laccase酶活性的变化 | 第70-71页 |
| 5.4 讨论 | 第71-72页 |
| 5.5 小结 | 第72-73页 |
| 第6章 结论、创新点与展望 | 第73-77页 |
| 6.1 结论 | 第73-74页 |
| 6.2 创新点 | 第74页 |
| 6.3 展望 | 第74-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第87页 |
