摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第16-41页 |
1.1 植物化学物 | 第16页 |
1.1.1 植物多酚 | 第16页 |
1.1.2 植物多酚的存在形式及主要功能 | 第16页 |
1.2 代谢综合征与脂代谢紊乱 | 第16-17页 |
1.3 植物多酚对脂代谢的调节作用 | 第17页 |
1.4 植物多酚调节肝脂代谢的作用机制 | 第17-22页 |
1.4.1 降低脂类的吸收 | 第17-18页 |
1.4.2 促进脂类氧化分解及抑制脂类物质生物合成 | 第18-20页 |
1.4.3 通过MicroRNA对脂类代谢进行调节 | 第20-21页 |
1.4.4 通过改善氧化应激和炎症反应对脂代谢进行调节 | 第21-22页 |
1.4.5 通过自噬作用对脂代谢进行调节 | 第22页 |
1.5 杨桃概况 | 第22-26页 |
1.5.1 杨桃及其分布区域 | 第22页 |
1.5.2 杨桃的营养成分及其加工利用 | 第22-24页 |
1.5.3 杨桃的药用价值及其植物化学物的功能 | 第24-26页 |
1.6 本研究的目的意义 | 第26页 |
1.7 主要研究内容 | 第26-28页 |
参考文献 | 第28-41页 |
第二章 不同品种杨桃酚类物质组成及其游离酚提取物体外抗氧化活性 | 第41-63页 |
2.1 前言 | 第41-42页 |
2.2 材料与设备 | 第42-43页 |
2.2.1 化学品、试剂及相关材料 | 第42-43页 |
2.2.2 主要仪器设备 | 第43页 |
2.2.3 样品的收集和准备 | 第43页 |
2.3 实验方法 | 第43-47页 |
2.3.1 杨桃游离酚的提取 | 第43-44页 |
2.3.2 杨桃结合酚的提取 | 第44页 |
2.3.3 杨桃提取物中酚类物质含量的测定 | 第44页 |
2.3.4 杨桃提取物中黄酮类物质含量的测定 | 第44-45页 |
2.3.5 游离酚提取物的HPLC分析 | 第45页 |
2.3.6 杨桃游离酚提取物抗氧化活性的测定 | 第45-47页 |
2.3.7 统计分析方法 | 第47页 |
2.4 结果与讨论 | 第47-57页 |
2.4.1 不同品种杨桃的多酚含量 | 第47-48页 |
2.4.2 不同品种杨桃的黄酮含量 | 第48-49页 |
2.4.3 结合酚对总酚的贡献率 | 第49-50页 |
2.4.4 杨桃游离酚中部分主要的酚类单体化合物 | 第50-54页 |
2.4.5 杨桃游离酚提取物的氧自由基吸收能力 | 第54页 |
2.4.6 杨桃游离酚提取物的过氧自由基清除能力 | 第54-55页 |
2.4.7 杨桃游离酚提取物的细胞抗氧化活性 | 第55-57页 |
2.4.8 多酚含量与抗氧化活性的相关性 | 第57页 |
2.5 本章小结 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
第三章 杨桃游离酚提取物降脂活性评价 | 第63-95页 |
3.1 前言 | 第63页 |
3.2 实验试剂与设备 | 第63-64页 |
3.2.1 实验试剂及相关材料 | 第63-64页 |
3.2.2 主要仪器与设备 | 第64页 |
3.3 实验方法 | 第64-70页 |
3.3.1 杨桃游离多酚的提取 | 第64-65页 |
3.3.2 酚类提取物对3T3-L1前脂肪细胞脂滴生成的影响 | 第65-66页 |
3.3.3 酚类提取物对L02正常肝细胞肝脂变性的影响 | 第66-67页 |
3.3.4 动物的饲养 | 第67-68页 |
3.3.5 急性毒性试验 | 第68页 |
3.3.6 杨桃游离酚提取物对实验动物的干预 | 第68-69页 |
3.3.7 血脂含量的测定 | 第69页 |
3.3.8 肝脏脂类物质分析 | 第69页 |
3.3.9 粪便脂类物质分析 | 第69页 |
3.3.10 肝组织形态学观察(H&E染色) | 第69页 |
3.3.11 肝组织脂滴量的观察(油红O染色) | 第69-70页 |
3.3.12 数据分析方法 | 第70页 |
3.4 结果与讨论 | 第70-91页 |
3.4.1 杨桃游离酚提取物对3T3-L1细胞分化的影响 | 第70-75页 |
3.4.2 杨桃游离酚提取物对L02细胞肝脂变性的影响 | 第75-79页 |
3.4.3 Taiguo杨桃游离酚提取物(ACF)对db/db肥胖小鼠的急性毒性 | 第79-80页 |
3.4.4 ACF对db/db小鼠饮食量的影响 | 第80-81页 |
3.4.5 ACF对db/db小鼠体重的影响 | 第81页 |
3.4.6 ACF对db/db小鼠血脂含量的影响 | 第81-85页 |
3.4.7 ACF对db/db小鼠肝脏脏器指数的影响 | 第85页 |
3.4.8 ACF对db/db小鼠肝脂含量的影响 | 第85-87页 |
3.4.9 ACF对db/db小鼠粪脂含量的影响 | 第87-89页 |
3.4.10 ACF对db/db小鼠肝脏组织形态学的影响 | 第89-91页 |
3.5 本章小结 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-95页 |
第四章 杨桃游离酚降脂活性单体及活性单体联合降低肝脂变性的研究 | 第95-114页 |
4.1 前言 | 第95-96页 |
4.2 实验试剂与设备 | 第96-97页 |
4.2.1 实验试剂及相关材料 | 第96页 |
4.2.2 主要仪器与设备 | 第96-97页 |
4.3 实验方法 | 第97-98页 |
4.3.1 诱导3T3-L1细胞脂肪生成模型的建立 | 第97页 |
4.3.2 杨桃中6种单体化合物对3T3-L1细胞毒性的测定 | 第97页 |
4.3.3 酚类单体化合物抑制3T3-L1细胞脂肪生成的活性测定 | 第97页 |
4.3.4 L02细胞脂肪变性模型的建立 | 第97页 |
4.3.5 杨桃中6种单体化合物对L02细胞毒性的测定 | 第97页 |
4.3.6 各单体化合物抑制L02细胞肝脂变性活性的测定 | 第97-98页 |
4.3.7 单体化合物联合作用对L02细胞毒性的测定 | 第98页 |
4.3.8 单体化合物联合作用抑制肝脂变性的交互作用测定 | 第98页 |
4.3.9 交互作用的计算 | 第98页 |
4.3.10 数据分析与处理 | 第98页 |
4.4 结果与讨论 | 第98-111页 |
4.4.1 各单体化合物对3T3-L1细胞毒性的测定 | 第98-99页 |
4.4.2 各单体化合物抑制3T3-L1细胞脂肪生成的表观形态学观察 | 第99-100页 |
4.4.3 各单体化合物对3T3-L1细胞分化为脂滴的抑制活性的测定 | 第100-104页 |
4.4.4 各单体化合物对L02细胞毒性的测定 | 第104-105页 |
4.4.5 各单体化合物抑制L02细胞肝脂变性的表观形态学观察 | 第105-106页 |
4.4.6 各单体化合物对L02细胞肝脂变性的抑制效果 | 第106-108页 |
4.4.7 活性单体联合作用对L02细胞的毒性作用 | 第108页 |
4.4.8 主要降脂活性化合物体外抑制肝脏脂肪累积的联合作用 | 第108-111页 |
4.5 本章小结及展望 | 第111页 |
参考文献 | 第111-114页 |
第五章 杨桃游离酚提取物降低非酒精性肝脏脂肪变性的作用机理研究 | 第114-151页 |
5.1 前言 | 第114页 |
5.2 材料和设备 | 第114-116页 |
5.2.1 实验试剂 | 第114-115页 |
5.2.2 仪器与设备 | 第115-116页 |
5.3 实验方法 | 第116-120页 |
5.3.1 体内抗氧化活性的测定 | 第116页 |
5.3.2 体内炎症因子含量的测定 | 第116页 |
5.3.3 肝脏功能指标的测定 | 第116页 |
5.3.4 血清胰岛素含量的测定及胰岛素抵抗指数的计算 | 第116页 |
5.3.5 肝脏总RNA的提取及cDNA的制备 | 第116-117页 |
5.3.6 实时荧光定量PCR | 第117-118页 |
5.3.7 蛋白免疫印迹 | 第118页 |
5.3.8 MicroRNA的实时荧光定量PCR | 第118-120页 |
5.3.9 数据分析 | 第120页 |
5.4 结果与分析 | 第120-145页 |
5.4.1 ACF对小鼠肝脏抗氧化活性的影响 | 第120-125页 |
5.4.2 ACF对小鼠血清中炎症因子含量的影响 | 第125-126页 |
5.4.3 ACF对小鼠肝脏功能的影响 | 第126-128页 |
5.4.4 ACF对小鼠胰岛素抵抗的作用 | 第128-129页 |
5.4.5 ACF对小鼠肝脂代谢相关基因表达的影响 | 第129-136页 |
5.4.6 ACF对小鼠AMPK肝脂肪生成通路蛋白表达的影响 | 第136-139页 |
5.4.7 ACF对小鼠AMPK肝脂肪生成通路相关microRNA表达的影响 | 第139-142页 |
5.4.8 ACF对其他可能间接影响AMPK肝脂生成通路的microRNA的作用.. | 第142-145页 |
5.5 本章小结 | 第145页 |
参考文献 | 第145-151页 |
结论与展望 | 第151-154页 |
1.结论 | 第151-152页 |
2.创新点 | 第152页 |
3.展望 | 第152-154页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第154-155页 |
致谢 | 第155-156页 |
附件 | 第156页 |