| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-35页 |
| 1.1 植物化学物 | 第13-16页 |
| 1.1.1 酚类化合物 | 第13-14页 |
| 1.1.2 全谷物酚类化合物的存在形式及其提取方法 | 第14-15页 |
| 1.1.3 全谷物的酚类化合物组成 | 第15-16页 |
| 1.2 抗氧化活性评价方法 | 第16-18页 |
| 1.2.1 化学抗氧化法 | 第16-17页 |
| 1.2.2 细胞抗氧化法 | 第17页 |
| 1.2.3 体内抗氧化法 | 第17-18页 |
| 1.3 植物化学物的抗癌细胞增殖活性及其作用机制 | 第18-21页 |
| 1.3.1 细胞周期和细胞凋亡信号转导机制 | 第18-20页 |
| 1.3.2 抗癌细胞增殖活性 | 第20-21页 |
| 1.4 大麦 | 第21-23页 |
| 1.4.1 青稞及其分布区域 | 第22页 |
| 1.4.2 青稞的营养成分及其加工利用 | 第22页 |
| 1.4.3 青稞的植物化学物及其功能性质 | 第22-23页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第23-24页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-35页 |
| 第二章 青稞的酚类化合物组成 | 第35-60页 |
| 2.1 前言 | 第35-36页 |
| 2.2 材料与设备 | 第36-37页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第36页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.3 主要仪器与设备 | 第37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.3.1 样品处理 | 第37-38页 |
| 2.3.2 游离态提取物的制备 | 第38页 |
| 2.3.3 结合态提取物的制备 | 第38页 |
| 2.3.4 总酚含量的测定 | 第38-39页 |
| 2.3.5 总黄酮含量的测定 | 第39-40页 |
| 2.3.6 花青素含量的测定 | 第40页 |
| 2.3.7 酚类化合物组成分析 | 第40页 |
| 2.3.8 数据统计与分析 | 第40页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第40-55页 |
| 2.4.1 青稞总酚、总黄酮和花青素含量 | 第41-42页 |
| 2.4.2 青稞的酚类化合物组成 | 第42-49页 |
| 2.4.3 青稞胚乳和麸皮/胚芽部位的总酚含量 | 第49页 |
| 2.4.4 青稞胚乳和麸皮/胚芽部位的酚类化合物组成 | 第49-55页 |
| 2.5 本章小结 | 第55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 第三章 青稞在2,2'-偶氮二异丁基脒二盐酸盐（ABAP）诱导下的抗氧化活性 | 第60-79页 |
| 3.1 前言 | 第60页 |
| 3.2 材料与设备 | 第60-61页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第60页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.3 主要仪器设备 | 第61页 |
| 3.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 3.3.1 青稞游离态、结合态提取物的制备 | 第61页 |
| 3.3.2 氧自由基吸收能力（ORAC）的测定 | 第61-62页 |
| 3.3.3 过氧自由基清除能力（PSC）的测定 | 第62页 |
| 3.3.4 细胞抗氧化活性（CAA）的测定 | 第62-64页 |
| 3.3.5 数据统计与分析 | 第64页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第64-75页 |
| 3.4.1 青稞提取物在ABAP诱导下化学体系中的抗氧化活性 | 第64-67页 |
| 3.4.2 青稞提取物在ABAP诱导下的细胞抗氧化活性 | 第67-72页 |
| 3.4.3 青稞提取物的细胞抗氧化质量 | 第72-75页 |
| 3.5 本章小结 | 第75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 第四章 体外酶消化对青稞酚类化合物的释放及抗氧化活性的影响 | 第79-98页 |
| 4.1 前言 | 第79-80页 |
| 4.2 材料与设备 | 第80页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第80页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第80页 |
| 4.2.3 主要仪器与设备 | 第80页 |
| 4.3 实验方法 | 第80-83页 |
| 4.3.1 样品的处理 | 第80页 |
| 4.3.2 酶分步消化 | 第80-81页 |
| 4.3.3 游离态和结合态提取物的制备 | 第81页 |
| 4.3.4 酚类化合物组成分析 | 第81页 |
| 4.3.5 抗氧化活性（ORAC）的测定 | 第81页 |
| 4.3.6 细胞抗氧化活性（CAA）的测定 | 第81页 |
| 4.3.7 数据统计与分析 | 第81-83页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第83-94页 |
| 4.4.1 酚类化合物组成 | 第83-85页 |
| 4.4.2 抗氧化活性 | 第85-88页 |
| 4.4.3 细胞抗氧化活性 | 第88-94页 |
| 4.5 本章小结 | 第94页 |
| 参考文献 | 第94-98页 |
| 第五章 青稞的抗肿瘤细胞增殖活性及其对CACO-2细胞P38/MAPK信号转导通路的调控 | 第98-130页 |
| 5.1 前言 | 第98页 |
| 5.2 材料与设备 | 第98-99页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第98页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第98-99页 |
| 5.2.3 实验仪器与设备 | 第99页 |
| 5.3 实验方法 | 第99-102页 |
| 5.3.1 细胞培养 | 第99-100页 |
| 5.3.2 游离态、结合态提取物的制备 | 第100页 |
| 5.3.3 抗肿瘤细胞增殖活性的测定 | 第100页 |
| 5.3.4 细胞毒性的测定 | 第100页 |
| 5.3.5 Western blot实验 | 第100-102页 |
| 5.3.6 数据统计与分析 | 第102页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第102-124页 |
| 5.4.1 青稞游离态、结合态提取物对HepG2细胞的抗增殖活性 | 第102-106页 |
| 5.4.2 青稞游离态、结合态提取物对MDA-MB-231 细胞的抗增殖活性 | 第106-110页 |
| 5.4.3 青稞游离态、结合态提取物对Caco-2 细胞的抗增殖活性 | 第110-114页 |
| 5.4.4 青稞的抗肿瘤细胞增殖活性是其植物化学物共同作用的结果 | 第114-115页 |
| 5.4.5 青稞提取物对Caco-2 细胞的抗增殖作用机理 | 第115-124页 |
| 5.5 本章小结 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-130页 |
| 结论与展望 | 第130-133页 |
| 1. 结论 | 第130-131页 |
| 2. 论文创新点 | 第131页 |
| 3. 展望 | 第131-133页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第133-135页 |
| 致谢 | 第135-136页 |
| 附表 | 第136页 |
