| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第14-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-42页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 量子点概述 | 第16-21页 |
| 1.2.1 量子点的主要类型 | 第17-18页 |
| 1.2.2 量子点的物理化学性质 | 第18-19页 |
| 1.2.3 量子点的制备方法 | 第19-21页 |
| 1.3 量子点在各个领域的广泛应用 | 第21-26页 |
| 1.3.1 食品安全领域的应用 | 第21-23页 |
| 1.3.2 生物医学成像领域的应用 | 第23-25页 |
| 1.3.3 光电学领域的应用 | 第25-26页 |
| 1.4 量子点的抗微生物活性研究 | 第26-40页 |
| 1.4.1 几种常见猪病毒的简介 | 第26-29页 |
| 1.4.2 致病细菌和动物病毒对食品安全的影响 | 第29页 |
| 1.4.3 量子点在抗菌方面的研究 | 第29-33页 |
| 1.4.4 量子点在抗病毒方面的研究 | 第33-40页 |
| 1.5 课题设计及研究意义 | 第40-42页 |
| 第二章 碲化镉量子点对猪伪狂犬病毒(PRV)的抗病毒研究 | 第42-58页 |
| 2.1 研究目的与意义 | 第42-43页 |
| 2.2 实验材料 | 第43-45页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第43页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第43-44页 |
| 2.2.3 细胞与毒株 | 第44页 |
| 2.2.4 培养基及相关试剂的制备 | 第44-45页 |
| 2.3 实验方法 | 第45-47页 |
| 2.3.1 谷胱甘肽修饰碲化镉量子点(GSH-CdTe QDs)的制备及纯化 | 第45页 |
| 2.3.2 MTT法测定GSH-CdTe QDs的细胞毒性 | 第45页 |
| 2.3.3 空斑试验 | 第45-46页 |
| 2.3.4 一步生长曲线 | 第46页 |
| 2.3.5 荧光分析 | 第46-47页 |
| 2.3.6 病毒侵入试验 | 第47页 |
| 2.3.7 病毒穿入试验 | 第47页 |
| 2.3.8 数据分析 | 第47页 |
| 2.4 结果与分析 | 第47-56页 |
| 2.4.1 GSH-CdTe QDs和PRV的表征分析 | 第47-48页 |
| 2.4.2 GSH-CdTe QDs的细胞毒性 | 第48-49页 |
| 2.4.3 GSH-CdTe QDs对PRV复制的影响 | 第49-53页 |
| 2.4.4 不同电荷和不同尺寸的GSH-CdTe QDs对PRV侵入的影响 | 第53页 |
| 2.4.5 GSH-CdTe QDs与病毒相互作用的机理 | 第53-56页 |
| 2.5 讨论 | 第56-57页 |
| 2.6 总结 | 第57-58页 |
| 第三章 基于聚乙烯二胺的碳量子点对猪伪狂犬病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的抗病毒研究 | 第58-75页 |
| 3.1 研究目的及意义 | 第58-59页 |
| 3.2 实验材料 | 第59-60页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第59页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第59-60页 |
| 3.2.3 细胞与毒株 | 第60页 |
| 3.3 实验方法 | 第60-64页 |
| 3.3.1 碳量子点(CDs)的合成 | 第60页 |
| 3.3.2 MTT法测定CDs的细胞毒性 | 第60-61页 |
| 3.3.3 病毒的复制分析 | 第61页 |
| 3.3.4 空斑试验 | 第61页 |
| 3.3.5 TCID50试验 | 第61-62页 |
| 3.3.6 Western blot分析 | 第62页 |
| 3.3.7 间接免疫荧光试验 | 第62页 |
| 3.3.8 RNA提取及荧光定量RT-PCR分析 | 第62-64页 |
| 3.3.9 数据统计学分析 | 第64页 |
| 3.4 结果与分析 | 第64-73页 |
| 3.4.1 CDs的表征 | 第64-66页 |
| 3.4.2 CDs的细胞毒性 | 第66-67页 |
| 3.4.3 CDs对PRV病毒(DNA病毒)的影响 | 第67-70页 |
| 3.4.4 CDs对PRRSV病毒(RNA病毒)的影响 | 第70-71页 |
| 3.4.5 CDs激活Ⅰ干扰素反应 | 第71-73页 |
| 3.5 讨论 | 第73-74页 |
| 3.6 总结 | 第74-75页 |
| 第四章 基于姜黄素的碳量子点对猪流行性腹泻病毒(PEDV)的抗病毒研究 | 第75-96页 |
| 4.1 研究目的及意义 | 第75-77页 |
| 4.2 实验材料 | 第77-78页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第77页 |
| 4.2.2 细胞与毒株 | 第77-78页 |
| 4.3 实验方法 | 第78-81页 |
| 4.3.1 姜黄素碳量子点(CCM-CDs)的制备 | 第78页 |
| 4.3.2 MTT法测定CCM-CDs的细胞毒性 | 第78页 |
| 4.3.3 病毒滴度的测定 | 第78页 |
| 4.3.4 病毒的一步生长曲线 | 第78-79页 |
| 4.3.5 间接免疫荧光试验 | 第79页 |
| 4.3.6 Western blot分析 | 第79页 |
| 4.3.7 病毒的侵入试验 | 第79页 |
| 4.3.8 病毒的穿入试验 | 第79页 |
| 4.3.9 病毒负链RNA的复制 | 第79-80页 |
| 4.3.10 RNA提取与荧光定量RT-PCR试验 | 第80页 |
| 4.3.11 病毒的释放试验 | 第80页 |
| 4.3.12 ROS产生的测定 | 第80-81页 |
| 4.3.13 数据统计学分析 | 第81页 |
| 4.4 结果与分析 | 第81-94页 |
| 4.4.1 CCM-CDs的表征 | 第81-84页 |
| 4.4.2 CCM-CDs的细胞毒性 | 第84-85页 |
| 4.4.3 CCM-CDs对PEDV增殖的影响 | 第85-86页 |
| 4.4.4 CCM-CDs对PEDVN蛋白表达的影响 | 第86-87页 |
| 4.4.5 CCM-CDs和EDA-CDs对PEDV增殖的影响比较 | 第87-88页 |
| 4.4.6 CCM-CDs对PEDV复制周期的影响 | 第88-92页 |
| 4.4.7 CCM-CDs激活抗病毒天然免疫反应 | 第92-93页 |
| 4.4.8 CCM-CDs抑制ROS的产生 | 第93-94页 |
| 4.5 讨论 | 第94-95页 |
| 4.6 总结 | 第95-96页 |
| 第五章 硫化银量子点对猪流行性腹泻病毒的抗病毒研究 | 第96-118页 |
| 5.1 研究目的及意义 | 第96-97页 |
| 5.2 实验材料 | 第97-98页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第97-98页 |
| 5.2.2 细胞、毒株与质粒 | 第98页 |
| 5.3 实验方法 | 第98-101页 |
| 5.3.1 硫化银量子点(Ag_2S QDs)的制备 | 第98页 |
| 5.3.2 MTT和CCK-8法测定Ag_2S QDs的细胞毒性 | 第98-99页 |
| 5.3.3 病毒的一步生长曲线 | 第99页 |
| 5.3.4 空斑试验 | 第99页 |
| 5.3.5 间接免疫荧光试验 | 第99页 |
| 5.3.6 Western blot分析 | 第99页 |
| 5.3.7 病毒的吸附试验 | 第99页 |
| 5.3.8 病毒的穿入试验 | 第99页 |
| 5.3.9 病毒负链RNA的复制 | 第99页 |
| 5.3.10 RNA提取和荧光定量RT-PCR | 第99-100页 |
| 5.3.11 释放分析 | 第100页 |
| 5.3.12 双荧光素酶试验 | 第100页 |
| 5.3.13 数据统计学分析 | 第100-101页 |
| 5.4 结果与分析 | 第101-116页 |
| 5.4.1 Ag_2S QDs的表征 | 第101-103页 |
| 5.4.2 Ag_2S QDs细胞毒性 | 第103-105页 |
| 5.4.3 Ag_2S QDs对PEDV增殖的影响 | 第105-106页 |
| 5.4.4 不同尺寸的Ag_2S QDs对PEDV增殖的影响 | 第106-107页 |
| 5.4.5 Ag~+和S~(2-)对PEDV增殖的影响 | 第107-109页 |
| 5.4.6 Ag_2Te NPs对PEDV增殖的影响 | 第109页 |
| 5.4.7 Ag_2S QDs对其他RNA病毒(PRRSV)增殖的影响 | 第109-110页 |
| 5.4.8 Ag_2S QDs抗病毒机理探究 | 第110-116页 |
| 5.5 讨论 | 第116-117页 |
| 5.6 总结 | 第117-118页 |
| 第六章 全文总结及展望 | 第118-121页 |
| 6.1 全文总结 | 第118-120页 |
| 6.2 展望 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-145页 |
| 致谢 | 第145-147页 |
| 附录 | 第147-150页 |
