| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 黄酒概述 | 第11页 |
| 1.2 酒精饮料生物活性成分 | 第11-17页 |
| 1.2.1 葡萄酒生物活性成分 | 第11-13页 |
| 1.2.2 清酒生物活性成分 | 第13-15页 |
| 1.2.3 黄酒生物活性成分 | 第15-17页 |
| 1.3 多糖提取分离 | 第17-19页 |
| 1.3.1 多糖的提取 | 第17-18页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
| 1.4 多糖生物活性 | 第19-24页 |
| 1.4.1 多糖的免疫调节活性 | 第19-20页 |
| 1.4.2 多糖的抗肿瘤作用 | 第20-21页 |
| 1.4.3 多糖的抗凝血作用 | 第21-22页 |
| 1.4.4 多糖的抗病毒作用 | 第22-23页 |
| 1.4.5 多糖的降血脂作用 | 第23-24页 |
| 1.4.6 其它作用 | 第24页 |
| 1.5 本文的研究意义 | 第24页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 黄酒多糖的提取及抗氧化作用 | 第26-40页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 材料与方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第26页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第26页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-39页 |
| 2.3.1 浓缩比对黄酒多糖提取效果的影响 | 第29页 |
| 2.3.2 乙醇浓度对黄酒多糖提取效果的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.3 醇沉时间对黄酒多糖提取效果的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.4 醇沉温度对多糖提取效果的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.5 多糖醇沉工艺的优化 | 第32-36页 |
| 2.3.6 黄酒多糖的体外抗氧化活性 | 第36-39页 |
| 2.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 黄酒多糖的分离及理化性质 | 第40-53页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 材料与方法 | 第40-44页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第41页 |
| 3.2.3 主要仪器设备 | 第41页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 3.3.1 黄酒多糖 DEAE-Sepharose FF 色谱柱 | 第44-45页 |
| 3.3.2 黄酒多糖葡聚糖凝胶 G75 分离纯化 | 第45页 |
| 3.3.3 黄酒多糖 CRWP1 的纯度鉴定和分子量的测定 | 第45-46页 |
| 3.3.4 黄酒多糖 CRWP1 的单糖组成 | 第46-48页 |
| 3.3.5 黄酒多糖组分 CRWP1 紫外光谱分析 | 第48页 |
| 3.3.6 黄酒多糖组分 CRWP1 红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 3.3.7 黄酒多糖组分 CRWP1 三股螺旋结构 | 第49-50页 |
| 3.3.8 黄酒多糖组分 CRWP1 核磁共振分析 | 第50-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 黄酒多糖的免疫活性作用研究 | 第53-64页 |
| 4.1 前言 | 第53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-55页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第54页 |
| 4.2.3 主要仪器设备 | 第54页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第54-55页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-63页 |
| 4.3.1 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠体重的影响 | 第55-56页 |
| 4.3.2 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠脏器指数的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.3 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠吞噬指数α的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.4 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠淋巴细胞增殖的影响 | 第58页 |
| 4.3.5 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠血清细胞因子的影响 | 第58-61页 |
| 4.3.6 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠免疫球蛋白的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.7 黄酒多糖对免疫缺陷小鼠补体的影响 | 第62-63页 |
| 4.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 第五章 黄酒多糖的抗肿瘤活性研究 | 第64-74页 |
| 5.1 前言 | 第64页 |
| 5.2 材料与方法 | 第64-67页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第64-65页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第65页 |
| 5.2.3 主要仪器设备 | 第65页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第65-67页 |
| 5.2.5 统计方法 | 第67页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第67-73页 |
| 5.3.1 黄酒多糖对 S180 荷瘤小鼠免疫器官和肿瘤抑制作用的影响 | 第67-69页 |
| 5.3.2 黄酒多糖对环磷酰胺（CY）的增效减毒作用 | 第69-71页 |
| 5.3.3 S180 瘤组织中 Ki-67 蛋白的表达 | 第71页 |
| 5.3.4 S180 瘤组织中 Cyclin D1 蛋白的表达 | 第71-72页 |
| 5.3.5 S180 瘤组织中 Bax 和 Bcl-2 蛋白的表达 | 第72-73页 |
| 5.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第六章 黄酒多糖对肠道微生物的调控作用研究 | 第74-84页 |
| 6.1 前言 | 第74-75页 |
| 6.2 材料与方法 | 第75-77页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第75页 |
| 6.2.2 主要试剂 | 第75页 |
| 6.2.3 主要仪器设备 | 第75-76页 |
| 6.2.4 实验方法 | 第76-77页 |
| 6.2.5 数据处理和统计 | 第77页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第77-83页 |
| 6.3.1 黄酒多糖对模拟胃液的抗消化性 | 第77-78页 |
| 6.3.2 黄酒多糖对α-淀粉酶的抗消化性 | 第78-79页 |
| 6.3.3 黄酒多糖对小鼠肠道菌群的调节作用 | 第79-82页 |
| 6.3.4 黄酒多糖对小鼠肠道中短链脂肪酸及乳酸含量的影响 | 第82-83页 |
| 6.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 主要结论与展望 | 第84-86页 |
| 主要结论 | 第84-85页 |
| 展望 | 第85-86页 |
| 主要创新点 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-99页 |
| 附录：攻读博士学位期间发表的论文清单 | 第99页 |
