| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第17-27页 |
| 1.1 真菌多糖的结构解析 | 第17-20页 |
| 1.1.1 一级结构解析 | 第17-19页 |
| 1.1.2 高级结构解析 | 第19-20页 |
| 1.2 真菌多糖的结构修饰 | 第20-22页 |
| 1.2.1 物理修饰 | 第20-21页 |
| 1.2.2 化学修饰 | 第21-22页 |
| 1.2.3 生物修饰 | 第22页 |
| 1.3 真菌多糖的生物活性 | 第22-23页 |
| 1.3.1 抗氧化活性 | 第22页 |
| 1.3.2 抗肿瘤活性 | 第22-23页 |
| 1.3.3 耐缺氧活性 | 第23页 |
| 1.3.4 抗凝血活性 | 第23页 |
| 1.4 真菌多糖的构效关系 | 第23-25页 |
| 1.4.1 主链对多糖活性的影响 | 第23-24页 |
| 1.4.2 支链对真菌多糖活性的影响 | 第24页 |
| 1.4.3 高级结构对多糖生物活性的影响 | 第24页 |
| 1.4.4 理化性质对多糖生物活性的影响 | 第24-25页 |
| 1.5 粒毛盘菌多糖的研究现状 | 第25-26页 |
| 1.5.1 粒毛盘菌多糖的发酵和提取 | 第25页 |
| 1.5.2 粒毛盘菌多糖的分离纯化 | 第25页 |
| 1.5.3 粒毛盘菌多糖的结构解析 | 第25-26页 |
| 1.5.4 粒毛盘菌多糖的分子修饰 | 第26页 |
| 1.5.5 粒毛盘菌多糖的生物活性 | 第26页 |
| 1.6 本课题研究的内容与意义 | 第26-27页 |
| 第二章 一种粒毛盘菌胞外多糖的结构表征和耐缺氧活性 | 第27-42页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料和方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 材料 | 第27页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第27-29页 |
| 2.2.3 实验动物 | 第29-30页 |
| 2.2.4 多糖的提取和纯化 | 第30页 |
| 2.2.5 LEP-1的纯化和分子量的测定 | 第30页 |
| 2.2.6 LEP-1的单糖组分的测定 | 第30页 |
| 2.2.7 LEP-1结构分析 | 第30-31页 |
| 2.2.8 LEP-1耐缺氧实验 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-41页 |
| 2.3.1 LEP-1的纯化和单糖组分分析 | 第32-33页 |
| 2.3.2 LEP-1的结构表征 | 第33-38页 |
| 2.3.3 LEP-1的耐缺氧活性 | 第38-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 一种粒毛盘菌胞外多糖硫酸酯化修饰及其生物活性 | 第42-54页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料与方法 | 第42-46页 |
| 3.2.2 主要试剂与仪器 | 第43页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第43-44页 |
| 3.2.4 LEP-1硫酸酯化衍生物的制备 | 第44页 |
| 3.2.5 SLEP-1硫酸基取代度的确定 | 第44页 |
| 3.2.6 扫描电子显微镜 | 第44页 |
| 3.2.7 紫外与红外光谱 | 第44页 |
| 3.2.8 核磁共振分析 | 第44-45页 |
| 3.2.9 LEP-1和SLEP-1的抗氧化活性测定 | 第45页 |
| 3.2.10 LEP-1和SLEP-1的体外抗凝血活性的测定 | 第45-46页 |
| 3.2.11 数据分析 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 3.3.1 SLEP-1中硫酸基团的取代度 | 第46页 |
| 3.3.2 LEP-1和SLEP-1的SEM | 第46-47页 |
| 3.3.3 LEP-1和SLEP-1的紫外和红外光谱 | 第47-48页 |
| 3.3.4 LEP-1和SLEP-1的核磁共振波谱分析 | 第48-49页 |
| 3.3.5 LEP-1和SLEP-1的体外抗氧化活性分析 | 第49-51页 |
| 3.3.6 LEP-1和SLEP-1的体外抗凝血活性分析 | 第51-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 第四章 一种粒毛盘菌胞外多糖硫酸酯化衍生物的抗凝血活性及其作用机制 | 第54-64页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 材料与方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 材料 | 第54页 |
| 4.2.2 主要试剂与仪器 | 第54-55页 |
| 4.2.3 实验动物 | 第55页 |
| 4.2.4 高凝模型小鼠的建立 | 第55-56页 |
| 4.2.5 出血时间(BT)的测定 | 第56页 |
| 4.2.6 小鼠全凝血时间(CT)的测定 | 第56页 |
| 4.2.7 活化的部分凝血酶时间(APTT)的测定 | 第56页 |
| 4.2.8 凝血酶原时间(PT)的测定 | 第56页 |
| 4.2.9 凝血酶时间(TT)的测定 | 第56页 |
| 4.2.10 纤维蛋白原(FIB)含量的测定 | 第56-57页 |
| 4.2.11 抗凝血酶Ⅲ(AT-HI)活性的测定 | 第57页 |
| 4.2.12 凝血因子Xa(FXa)的测定 | 第57页 |
| 4.2.13 数据与分析 | 第57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-63页 |
| 4.3.1 LEP-1和SLEP-1对高凝模型小鼠的CT和BT的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.2 LEP-1和SLEP-1对高凝模型小鼠的ATPP、PT和TT水平的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.3 LEP-1和SLEP-1对高凝模型小鼠的FIB水平的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.4 LEP-1和SLEP-1对高凝模型小鼠的AT-Ⅲ和FXa水平的影响 | 第61-63页 |
| 4.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 第五章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 结论 | 第64页 |
| 5.2 创新点 | 第64-65页 |
| 5.3 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-80页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及申报的专利 | 第80-81页 |
