| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 裙带菜 | 第11-12页 |
| 1.1.1 裙带菜概述 | 第11页 |
| 1.1.2 裙带菜孢子叶概述 | 第11-12页 |
| 1.2 岩藻黄质 | 第12-16页 |
| 1.2.1 岩藻黄质的提取方法 | 第12-14页 |
| 1.2.1.1 溶剂萃取法 | 第12页 |
| 1.2.1.2 微波萃取法 | 第12页 |
| 1.2.1.3 超临界流体萃取法 | 第12-13页 |
| 1.2.1.4 超声波提取法 | 第13页 |
| 1.2.1.5 酶解提取法 | 第13页 |
| 1.2.1.6 双水相提取法 | 第13-14页 |
| 1.2.2 岩藻黄质的生理活性 | 第14-16页 |
| 1.2.2.1 减肥作用 | 第14页 |
| 1.2.2.2 抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| 1.2.2.3 抗炎作用 | 第15页 |
| 1.2.2.4 抗氧化作用 | 第15-16页 |
| 1.3 脂质氧化的概述 | 第16-17页 |
| 1.3.1 过氧化脂质的危害 | 第16-17页 |
| 1.4 脂质抗氧化剂 | 第17-18页 |
| 1.5 电子自旋共振波谱技术研究进展 | 第18页 |
| 1.6 细胞氧化应激概述 | 第18-19页 |
| 1.7 主要研究内容及意义 | 第19-21页 |
| 第二章 超声波、酶解复合工艺制备岩藻黄质及其抗氧化活性研究 | 第21-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 原料处理 | 第22-23页 |
| 2.2.2 岩藻黄质粗提物的提取 | 第23页 |
| 2.2.3 岩藻黄质粗提物的含量测定 | 第23页 |
| 2.2.4 单因素实验 | 第23-24页 |
| 2.2.5 岩藻黄质对DPPH·清除作用 | 第24页 |
| 2.2.6 岩藻黄质对·OH清除作用 | 第24-25页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第25-31页 |
| 2.3.1 岩藻黄质提取工艺单因素的影响 | 第25-29页 |
| 2.3.1.1 提取溶剂对岩藻黄质提取量的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.1.2 料液比对岩藻黄质提取量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.1.3 超声时间对岩藻黄质提取量的影响 | 第27页 |
| 2.3.1.4 酶解时间对岩藻黄质提取量的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.1.5 酶解温度对岩藻黄质提取量的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.2 岩藻黄质对DPPH·的清除率 | 第29-30页 |
| 2.3.3 岩藻黄质对·OH的清除能力 | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 双水相提取工艺制备岩藻黄质及其对脂肪酶和α-淀粉酶活性影响 | 第32-44页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第32页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第32页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-37页 |
| 3.2.1 原料处理 | 第33页 |
| 3.2.2 乙醇-磷酸钾双水相体系配制 | 第33-34页 |
| 3.2.3 两相提取岩藻黄质工艺流程 | 第34-35页 |
| 3.2.4 料液比单因素实验 | 第35页 |
| 3.2.5 提取温度单因素实验 | 第35页 |
| 3.2.6 提取时间单因素实验 | 第35-36页 |
| 3.2.7 岩藻黄质含量测定 | 第36页 |
| 3.2.8 岩藻黄质对脂肪酶活性影响检测 | 第36页 |
| 3.2.9 岩藻黄质对α-淀粉酶活性影响检测 | 第36-37页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第37-42页 |
| 3.3.1 料液比对岩藻黄质提取量影响 | 第37-39页 |
| 3.3.2 提取温度对裙带菜孢子叶中岩藻黄质提取量的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.3 提取时间对裙带菜孢子叶中岩藻黄质提取量的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 岩藻黄质对脂肪酶活性影响 | 第41-42页 |
| 3.3.5 岩藻黄质对α-淀粉酶活性影响 | 第42页 |
| 3.4 本章小结 | 第42-44页 |
| 第四章 岩藻黄质抗脂质氧化及抗细胞氧化活性研究 | 第44-63页 |
| 4.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第44页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第44页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第44-45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.2.1 原料处理 | 第45页 |
| 4.2.2 岩藻黄质对鱼油氧化模型的抗氧化作用 | 第45页 |
| 4.2.3 岩藻黄质对猪肉氧化模型的抗氧化作用 | 第45-46页 |
| 4.2.4 基于ESR技术研究岩藻黄质对食品氧化模型的抗氧化作用 | 第46-47页 |
| 4.2.4.1 岩藻黄质对鱼油及玉米油氧化模型的抗氧作用 | 第46页 |
| 4.2.4.2 岩藻黄质对亚油酸氧化模型的抗氧作用 | 第46-47页 |
| 4.2.4.3 岩藻黄质对亚油酸盐氧化模型的抗氧作用 | 第47页 |
| 4.2.5 岩藻黄质小鼠细胞抗氧作用检测 | 第47-48页 |
| 4.2.5.1 细胞培养及预处理 | 第47页 |
| 4.2.5.2 细胞毒性检测 | 第47页 |
| 4.2.5.3 H_2O_2氧化损伤模型的建立 | 第47-48页 |
| 4.2.5.4 细胞体系ROS含量检测 | 第48页 |
| 4.2.5.5 MDA含量检测 | 第48页 |
| 4.2.5.6 抗氧化酶(SOD、CAT、GSH-Px)酶活力检测 | 第48页 |
| 4.2.6 数据统计 | 第48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-62页 |
| 4.3.1 岩藻黄质对鱼油氧化模型的抗氧作用 | 第48-49页 |
| 4.3.2 岩藻黄质对猪肉氧化模型的抗氧化能力 | 第49-50页 |
| 4.3.3 基于ESR技术研究岩藻黄质对食品氧化模型的抗氧作用 | 第50-57页 |
| 4.3.3.1 岩藻黄质对鱼油及玉米油氧化模型的抗氧作用 | 第50-54页 |
| 4.3.3.2 岩藻黄质对亚油酸氧化模型的抗氧作用 | 第54-56页 |
| 4.3.3.3 岩藻黄质对亚油酸盐氧化模型的抗氧作用 | 第56-57页 |
| 4.3.4 岩藻黄质对小鼠细胞的抗氧作用 | 第57-62页 |
| 4.3.4.1 H_2O_2氧化损伤的有效浓度 | 第57-58页 |
| 4.3.4.2 岩藻黄质的细胞毒性 | 第58-59页 |
| 4.3.4.3 岩藻黄质对氧化损伤细胞存活率的影响 | 第59页 |
| 4.3.4.4 岩藻黄质对氧化损伤细胞中ROS含量的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.4.5 岩藻黄质对经H_2O_2损伤RAW264.7细胞内MDA含量及SOD、CAT、GSH-Px酶活力的影响 | 第60-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 附录 | 第72页 |
