| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 鹅肉简介 | 第11-13页 |
| 1.2.1 鹅肉概述 | 第11-12页 |
| 1.2.2 鹅肉蛋白的营养价值 | 第12-13页 |
| 1.2.3 鹅肉蛋白研究进展 | 第13页 |
| 1.3 抗氧化肽 | 第13-17页 |
| 1.3.1 国内外抗氧化肽的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3.2 抗氧化肽的作用机理 | 第14-15页 |
| 1.3.3 抗氧化肽的制备方法 | 第15-16页 |
| 1.3.4 抗氧化肽的应用现状 | 第16-17页 |
| 1.3.4.1 在功能性食品中的应用 | 第16页 |
| 1.3.4.2 在食品添加剂中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3.4.3 在化妆品和医药工业中的应用 | 第17页 |
| 1.4 本课题研究的意义、目的与内容 | 第17-20页 |
| 1.4.1 意义和目的 | 第17-18页 |
| 1.4.2 本课题的研究内容 | 第18-19页 |
| 1.4.3 本课题的创新点 | 第19-20页 |
| 第2章 鹅肉蛋白酶解条件优化及酶解产物抗氧化活性研究 | 第20-32页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 试验材料和试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 鹅肉的预处理 | 第21页 |
| 2.2.2 总氮的测定 | 第21页 |
| 2.2.3 水解度的测定 | 第21页 |
| 2.2.4 酶解液对Fe~(3+)还原力的测定方法 | 第21-22页 |
| 2.2.5 酶种的确定 | 第22页 |
| 2.2.6 最优水解时间的确定 | 第22页 |
| 2.2.7 最优液固比的确定 | 第22-23页 |
| 2.2.8 最优加酶量的确定 | 第23页 |
| 2.2.9 最优pH的确定 | 第23页 |
| 2.2.10 最优温度的确定 | 第23页 |
| 2.2.11 响应曲面法对最佳水解工艺的优化 | 第23-24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-31页 |
| 2.3.1 总氮的测定 | 第24页 |
| 2.3.2 酶种的选择 | 第24-25页 |
| 2.3.3 最佳水解时间的确定 | 第25页 |
| 2.3.4 最佳固液比的确定 | 第25-26页 |
| 2.3.5 最佳加酶量的确定 | 第26-27页 |
| 2.3.6 最佳pH值的确定 | 第27页 |
| 2.3.7 最佳温度的确定 | 第27-28页 |
| 2.3.8 最佳水解条件的优化 | 第28-31页 |
| 2.3.8.1 三因素三水平Box-Behnken组合试验 | 第28页 |
| 2.3.8.2 回归模型的建立和显著性检验 | 第28-30页 |
| 2.3.8.3 水解度的响应面因素分析 | 第30-31页 |
| 2.3.5.4 验证性实验 | 第31页 |
| 2.4 小结 | 第31-32页 |
| 第3章 凝胶层析法分离鹅肉蛋白抗氧化肽 | 第32-42页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 鹅肉粗肽粉的制备 | 第33页 |
| 3.2.2 凝胶层析法 | 第33-34页 |
| 3.2.2.1 凝胶的预处理 | 第33页 |
| 3.2.2.2 树脂的填充过程 | 第33-34页 |
| 3.2.2.3 填充质量的评估 | 第34页 |
| 3.2.2.4 柱的平衡 | 第34页 |
| 3.2.3 上样和洗脱 | 第34页 |
| 3.2.4 SephadexG-25分离条件的优化 | 第34-35页 |
| 3.2.4.1 洗脱流速的确定 | 第34页 |
| 3.2.4.2 上样体积的确定 | 第34页 |
| 3.2.4.3 上样浓度的确定 | 第34-35页 |
| 3.2.5 SephadexG-15分离抗氧化肽 | 第35页 |
| 3.3 鹅肉抗氧化肽抗氧化特性的测定 | 第35-36页 |
| 3.3.1 三价铁离子还原力的测定 | 第35页 |
| 3.3.2. DPPH自由基清除率的测定 | 第35-36页 |
| 3.4 鹅肉抗氧化肽相对分子质量的测定 | 第36页 |
| 3.5 实验结果与分析 | 第36-41页 |
| 3.5.1 SephadexG-25上样体积的确定 | 第36-37页 |
| 3.5.2 SephadexG-25上样浓度的确定 | 第37页 |
| 3.5.3 SephadexG-25洗脱流速的确定 | 第37-38页 |
| 3.5.4 SephadexG-25对抗氧化肽的分离 | 第38-39页 |
| 3.5.5 SephadexG-15对抗氧化肽的分离 | 第39-40页 |
| 3.5.6 鹅肉多肽相对分子质量的测定 | 第40-41页 |
| 3.6 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 鹅肉抗氧化肽对小鼠肠粘膜屏障的保护作用 | 第42-49页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第42-43页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第42页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 4.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 4.2.1 实验动物饲养管理 | 第43页 |
| 4.2.2 实验动物的分组及建立模型 | 第43页 |
| 4.2.3 检测指标及方法 | 第43-44页 |
| 4.2.3.1 血浆内毒素(ET)测定 | 第43页 |
| 4.2.3.2 白细胞介素-6(1L-6)测定 | 第43页 |
| 4.2.3.3 血浆TNF-α水平 | 第43-44页 |
| 4.2.3.4 小鼠小肠Ⅱ型PLA2含量的测定 | 第44页 |
| 4.2.3.5 肠道分泌型IgA含量 | 第44页 |
| 4.2.4 统计分析 | 第44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 4.3.1 LPS注射后小鼠的一般情况 | 第44页 |
| 4.3.2 小鼠血浆内毒素测定结果 | 第44-45页 |
| 4.3.3 小鼠血浆IL-6测定结果 | 第45-46页 |
| 4.3.4 小鼠血浆TNF-α测定结果 | 第46页 |
| 4.3.5 小鼠PLA_2含量测定结果 | 第46-47页 |
| 4.3.6 小鼠SIgA含量测定结果 | 第47-48页 |
| 4.4 小结 | 第48-49页 |
| 第5章 液相质谱联用技术对鹅肉抗氧化肽分离和序列分析 | 第49-56页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 5.1.1 实验材料与试剂 | 第49页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第49-50页 |
| 5.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 5.2.1 鹅肉分离蛋白氨基酸测定及评价 | 第50页 |
| 5.2.2 UPLC-MS分析抗氧化肽的结构 | 第50-51页 |
| 5.3 结果与分析 | 第51-55页 |
| 5.3.1 鹅肉多肽氨基酸组分分析结果 | 第51-53页 |
| 5.3.2 抗氧化活性肽UPLC的分离 | 第53页 |
| 5.3.3 鹅肉抗氧化肽结构的质谱鉴定 | 第53-55页 |
| 5.4 小结 | 第55-56页 |
| 全文结论 | 第56-57页 |
| 论文创新点 | 第57页 |
| 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
