| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 重要名词缩写 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| 引言 | 第12页 |
| 1.1 食用菌多糖的研究进展 | 第12-25页 |
| 1.1.1 多糖的提取与分离纯化 | 第12-15页 |
| 1.1.1.1 多糖的提取 | 第12-14页 |
| 1.1.1.1.1 水提法 | 第13页 |
| 1.1.1.1.2 酶提取法 | 第13页 |
| 1.1.1.1.3 超声辅助提取法 | 第13页 |
| 1.1.1.1.4 微波辅助提取法 | 第13-14页 |
| 1.1.1.2 多糖的纯化 | 第14-15页 |
| 1.1.1.3 多糖中蛋白、色素和其他杂质的去除 | 第15页 |
| 1.1.1.3.1 多糖中蛋白的去除 | 第15页 |
| 1.1.1.3.2 多糖中色素的去除 | 第15页 |
| 1.1.1.3.3 多糖中其他杂质的去除 | 第15页 |
| 1.1.2 多糖含量、纯度的测定和组成分析 | 第15-16页 |
| 1.1.2.1 多糖的含量测定 | 第15页 |
| 1.1.2.2 多糖纯度的测定 | 第15-16页 |
| 1.1.2.3 多糖中单糖组成的分析 | 第16页 |
| 1.1.3 多糖的结构分析 | 第16-22页 |
| 1.1.3.1 化学分析法 | 第17-18页 |
| 1.1.3.1.1 高碘酸氧化法 | 第17页 |
| 1.1.3.1.2 水解法 | 第17页 |
| 1.1.3.1.3 Smith降解 | 第17页 |
| 1.1.3.1.4 甲基化反应 | 第17-18页 |
| 1.1.3.2 物理分析法 | 第18-22页 |
| 1.1.3.2.1 紫外光谱法 | 第18页 |
| 1.1.3.2.2 红外光谱法 | 第18页 |
| 1.1.3.2.3 气相色谱法和液相色谱法 | 第18-19页 |
| 1.1.3.2.4 质谱法 | 第19页 |
| 1.1.3.2.5 核磁共振法 | 第19-22页 |
| 1.1.3.3 生物学方法 | 第22页 |
| 1.1.4 多糖的生物活性 | 第22-25页 |
| 1.1.4.1 免疫调节作用 | 第22-23页 |
| 1.1.4.2 抗肿瘤作用 | 第23页 |
| 1.1.4.3 抗病毒作用 | 第23-24页 |
| 1.1.4.4 降血脂、降血糖作用 | 第24页 |
| 1.1.4.5 抗氧化、抗衰老作用 | 第24-25页 |
| 1.1.4.6 其他作用 | 第25页 |
| 1.2 白牛肝菌的研究概况 | 第25-26页 |
| 1.2.1 白牛肝菌的生物学研究概况 | 第25-26页 |
| 1.2.2 白牛肝菌国内外研究概况 | 第26页 |
| 1.3 本研究的目的意义和主要内容 | 第26-28页 |
| 1.3.1 研究目的意义 | 第26-27页 |
| 1.3.2 研究的主要内容 | 第27-28页 |
| 第二章 白牛肝菌子实体多糖分离纯化、理化性质和抗氧化活性研究 | 第28-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第28-34页 |
| 2.1.1 材料和仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.1.1 实验原料 | 第28页 |
| 2.1.1.2 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.1.3 主要仪器 | 第29页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.1.2.1 白牛肝菌子实体多糖的提取和粗分离 | 第29-30页 |
| 2.1.2.2 白牛肝菌子实体提取物多糖含量的测定 | 第30-31页 |
| 2.1.2.2.1 粗提物中的总糖含量的测定 | 第30页 |
| 2.1.2.2.2 粗提物中的还原糖含量的测定 | 第30-31页 |
| 2.1.2.2.3 多糖含量计算 | 第31页 |
| 2.1.2.3 白牛肝菌子实体粗取物的抗氧化活性研究 | 第31-33页 |
| 2.1.2.3.1 羟基自由基(.OH)消除能力的测定 | 第31-32页 |
| 2.1.2.3.2 超氧阴离子自由基消除 | 第32页 |
| 2.1.2.3.3 消除能力实验 | 第32页 |
| 2.1.2.3.4 金属螯合能力 | 第32-33页 |
| 2.1.2.4 白牛肝菌子实体粗取物的分离纯化 | 第33-34页 |
| 2.1.2.4.1 粗多糖的阴离子交换柱层析 | 第33页 |
| 2.1.2.4.2 多糖的凝胶柱层析 | 第33页 |
| 2.1.2.4.3 多糖的纯度鉴定和分子量测定 | 第33-34页 |
| 2.1.2.4.4 多糖的紫外光谱检测 | 第34页 |
| 2.2 结果与分析 | 第34-44页 |
| 2.2.1 白牛肝菌子实体粗多糖的提取分离 | 第34页 |
| 2.2.2 白牛肝菌子实体提取物中多糖含量的测定 | 第34-35页 |
| 2.2.3 白牛肝菌子实体粗取物的抗氧化活性筛选研究 | 第35-39页 |
| 2.2.3.1 羟基自由基消除 | 第35-36页 |
| 2.2.3.2 超氧阴离子自由基消除 | 第36-37页 |
| 2.2.3.3 消除能力实验 | 第37-38页 |
| 2.2.3.4 金属螯合能力 | 第38-39页 |
| 2.2.4 多糖的分离纯化 | 第39-44页 |
| 2.2.4.1 粗多糖的离子柱层析 | 第39-40页 |
| 2.2.4.2 多糖的凝胶柱层析 | 第40-41页 |
| 2.2.4.3 样品纯度鉴定和分子量测定 | 第41-43页 |
| 2.2.4.3.1 样品纯度鉴定 | 第41-42页 |
| 2.2.4.3.2 样品分子量的测定 | 第42-43页 |
| 2.2.4.4 样品的紫外分析 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-46页 |
| 第三章 白牛肝菌子实体多糖的结构特征分析 | 第46-62页 |
| 第一节 白牛肝菌子实体多糖单糖组成研究 | 第46-54页 |
| 3.1.1 材料与仪器 | 第46-47页 |
| 3.1.1.1 材料 | 第46页 |
| 3.1.1.2 实验试剂 | 第46-47页 |
| 3.1.1.3 主要仪器 | 第47页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.1.2.1 红外光谱(IR)分析 | 第47页 |
| 3.1.2.2 单糖组成分析 | 第47-49页 |
| 3.1.2.2.1 标准单糖样品的乙酰化 | 第47-48页 |
| 3.1.2.2.2 样品的乙酰化处理 | 第48页 |
| 3.1.2.2.3 GC分析 | 第48页 |
| 3.1.2.2.4 色谱条件 | 第48-49页 |
| 3.1.3 结果与分析 | 第49-54页 |
| 3.1.3.1 多糖的红外光谱 | 第49-50页 |
| 3.1.3.1.1 BEPF1的红外光谱分析 | 第49页 |
| 3.1.3.1.2 BEPF2的红外光谱分析 | 第49-50页 |
| 3.1.3.2 样品的单糖组成的定量分析 | 第50-54页 |
| 3.1.3.2.1 混标中各单糖的保留时间及相对标准偏差 | 第50-52页 |
| 3.1.3.2.2 BEPF1中单糖的GC分析 | 第52-53页 |
| 3.1.3.2.3 BEPF2中单糖的GC分析 | 第53-54页 |
| 第二节 牛肝菌子实体多糖的结构鉴定 | 第54-62页 |
| 3.2.1 材料与方法 | 第54-55页 |
| 3.2.1.1 材料 | 第54页 |
| 3.2.1.2 方法 | 第54-55页 |
| 3.2.1.2.1 甲基化分析 | 第54页 |
| 3.2.1.2.2 完全甲基化样品的降解及还原 | 第54-55页 |
| 3.2.1.2.3 阿尔迪醇乙酸酯衍生物的制备 | 第55页 |
| 3.2.1.2.4 GC-MS分析 | 第55页 |
| 3.2.1.2.5 核磁共振(NMR)分析 | 第55页 |
| 3.2.2 结果与分析 | 第55-61页 |
| 3.2.2.1 BEPF1多糖亚基的结构解析 | 第55-61页 |
| 3.2.2.1.1 BEPF1的糖残基的连接方式分析 | 第55-57页 |
| 3.2.2.1.2 BEPF1核磁共振分析 | 第57-61页 |
| 3.2.3 结论 | 第61-62页 |
| 第四章 全文总结与展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 附录 | 第72-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第85页 |
