| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-24页 |
| 1.1 裂褶多糖（SPG）来源及制备 | 第14-16页 |
| 1.1.1 裂褶菌简介 | 第14-15页 |
| 1.1.2 裂褶多糖的提取 | 第15-16页 |
| 1.2 裂褶多糖的性质研究 | 第16-18页 |
| 1.2.1 裂褶多糖理化性质研究 | 第16-17页 |
| 1.2.2 裂褶多糖流变特性研究 | 第17-18页 |
| 1.3 活性多糖改性研究 | 第18-19页 |
| 1.3.1 常见多糖改性方法 | 第18页 |
| 1.3.2 多糖的超声改性研究 | 第18-19页 |
| 1.3.3 裂褶多糖改性研究 | 第19页 |
| 1.4 真菌多糖的生物活性研究 | 第19-22页 |
| 1.4.1 真菌多糖常见生物活性 | 第19-20页 |
| 1.4.2 裂褶多糖生物活性研究 | 第20页 |
| 1.4.3 真菌多糖的构效关系 | 第20-22页 |
| 1.5 研究目的与主要研究内容 | 第22-24页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第22页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 不同分子量超声裂褶多糖（USPG）制备 | 第24-37页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料与方法 | 第24-29页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第25页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2.3.1 超声处理对SPG降解作用研究 | 第29-32页 |
| 2.3.2 超声处理对SPG分子量降解动力学研究 | 第32-33页 |
| 2.3.3 不同分子量超声裂褶多糖（USPG）制备 | 第33-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 SPG和USPG级分的初级结构及流变特性 | 第37-48页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第37页 |
| 3.2.2 仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.2.4 数据分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-47页 |
| 3.3.1 SPG和USPG级分的初级结构 | 第39-41页 |
| 3.3.2 SPG和USPG级分的流变特性 | 第41-47页 |
| 3.4 总结 | 第47-48页 |
| 第四章 SPG和USPG级分的体外免疫及抗肿瘤活性研究 | 第48-59页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 材料与方法 | 第48-50页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第48-49页 |
| 4.2.2 仪器 | 第49页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第49-50页 |
| 4.3 数据处理 | 第50-51页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第51-58页 |
| 4.4.1 SPG和USPG级分对脾淋巴细胞增殖功效研究 | 第51-53页 |
| 4.4.2 SPG和USPG级分对脾淋巴细胞刺激IL-2 和TNF-a生成研究 | 第53-56页 |
| 4.4.3 SPG和USPG级分对巨噬细胞RAW264.7 释放NO产量研究 | 第56-57页 |
| 4.4.4 SPG和USPG级分对乳腺癌细胞T-47D抑制功效研究 | 第57-58页 |
| 4.5 结论 | 第58-59页 |
| 第五章 SPG和USPG级分的体内免疫及抗肿瘤活性研究 | 第59-75页 |
| 5.1 引言 | 第59页 |
| 5.2 材料与方法 | 第59-63页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第59-60页 |
| 5.2.2 仪器 | 第60页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第60-63页 |
| 5.3 数据处理 | 第63页 |
| 5.4 结果与分析 | 第63-74页 |
| 5.4.1 大鼠血清的免疫及抗肿瘤活性研究 | 第63-67页 |
| 5.4.2 S180肿瘤模型小鼠体内抗肿瘤活性研究 | 第67-74页 |
| 5.5 结论 | 第74-75页 |
| 第六章 全文结论和展望 | 第75-77页 |
| 6.1 全文结论 | 第75-76页 |
| 6.2 研究展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 作者简历 | 第83页 |
