| 中文摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 中文文摘 | 第5-13页 |
| 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 大曲的概述 | 第13-14页 |
| 1.2 不同香型白酒的特征风味物质 | 第14-15页 |
| 1.3 高温大曲的研究现状 | 第15-19页 |
| 1.3.1 酱香型白酒的市场现状 | 第15页 |
| 1.3.2 酱香型白酒的风味研究瓶颈 | 第15页 |
| 1.3.3 高温大曲在酱香型白酒中的作用 | 第15-16页 |
| 1.3.4 高温大曲中微生物区系分析 | 第16-17页 |
| 1.3.5 高温大曲中美拉德反应的研究 | 第17页 |
| 1.3.6 高温大曲中风味物质的研究 | 第17-18页 |
| 1.3.7 高温大曲酶系在白酒生产中的运用研究 | 第18页 |
| 1.3.8 高温大曲功能菌的研究 | 第18-19页 |
| 1.4 现代生物技术应用于传统高温大曲研究 | 第19-20页 |
| 1.4.1 宏基因组学技术 | 第19页 |
| 1.4.2 分子生态学技术 | 第19页 |
| 1.4.3 实时定量PCR技术 | 第19-20页 |
| 1.5 宏蛋白质组学技术 | 第20页 |
| 1.6 本课题研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.7 本课题研究的内容 | 第21-23页 |
| 第一章 高温大曲浸提液宏蛋白双向电泳技术方案 | 第23-43页 |
| 第一节 实验材料与方法 | 第23-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第23-25页 |
| 1.1.1 高温大曲 | 第23页 |
| 1.1.2 主要试剂和仪器 | 第23-24页 |
| 1.1.3 试剂的配制 | 第24-25页 |
| 1.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 1.2.1 高温大曲的复活 | 第25-26页 |
| 1.2.2 高温大曲浸提液的制备 | 第26页 |
| 1.2.3 Bradford法测定高温大曲浸提液蛋白质浓度 | 第26-27页 |
| 1.2.4 高温大曲浸提液褐变度的测定 | 第27页 |
| 1.2.5 高温大曲浸提液宏蛋白质组样品的制备 | 第27-28页 |
| 1.2.6 高温大曲宏蛋白组样品的双向电泳 | 第28-29页 |
| 1.2.7 双向电泳的优化 | 第29-30页 |
| 1.2.8 复活高温大曲宏蛋白质组样品的双向电泳 | 第30页 |
| 第二节 结果与分析 | 第30-40页 |
| 2.1 不同提取液浸提效果比较 | 第30-32页 |
| 2.1.1 蛋白质标准曲线的制作 | 第30-31页 |
| 2.1.2 高温大曲浸提液蛋白浓度及褐变度测定 | 第31-32页 |
| 2.1.3 高温大曲浸提液的SDS-PAGE比较 | 第32页 |
| 2.2 不同pH值乙酸-乙酸钠缓冲液浸提效果比较 | 第32-34页 |
| 2.2.1 不同pH值的浸提液蛋白浓度及褐变度测定 | 第32-33页 |
| 2.2.2 不同pH值浸提液的SDS-PAGE | 第33-34页 |
| 2.3 高温大曲浸提液不同制备方法的SDS-PAGE与分析 | 第34-35页 |
| 2.4 宏蛋白样品不同制备方法的双向电泳比较 | 第35-38页 |
| 2.4.1 TCA-丙酮法 | 第35-36页 |
| 2.4.2 Tris-饱和酚法 | 第36-37页 |
| 2.4.3 Tris-丙酮-酚改良法 | 第37-38页 |
| 2.5 双向电泳的优化 | 第38-40页 |
| 2.5.1 等电聚焦程序的优化 | 第38页 |
| 2.5.2 上样量的优化 | 第38-40页 |
| 2.6 复活高温大曲宏蛋白组的双向电泳 | 第40页 |
| 第三节 本章小结 | 第40-43页 |
| 第二章 普通高温大曲与强化高温大曲的宏蛋白质组学比较 | 第43-65页 |
| 第一节 实验材料与方法 | 第43-46页 |
| 1.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 1.1.1 高温大曲 | 第43页 |
| 1.1.2 主要试剂和仪器 | 第43页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第43-44页 |
| 1.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 1.2.1 强化高温大曲的制作 | 第44页 |
| 1.2.2 强化高温大曲的复活 | 第44页 |
| 1.2.3 强化高温大曲浸提液的制备 | 第44页 |
| 1.2.4 强化高温大曲宏蛋白质组样品的制备 | 第44-45页 |
| 1.2.5 强化高温大曲宏蛋白组样品的双向电泳 | 第45页 |
| 1.2.6 双向电泳图谱的鉴定 | 第45-46页 |
| 第二节 结果与分析 | 第46-62页 |
| 2.1 高温大曲浸提液蛋白质浓度与褐变度比较 | 第46-47页 |
| 2.2 强化高温大曲与普通高温大曲宏蛋白组图谱分析与比较 | 第47-50页 |
| 2.3 强化高温大曲和普通高温大曲宏蛋白组双向电泳图谱的鉴定 | 第50-61页 |
| 2.3.1 强化高温大曲宏蛋白组双向电泳图谱的鉴定 | 第50-56页 |
| 2.3.2 普通高温大曲宏蛋白质组的鉴定 | 第56-60页 |
| 2.3.3 蛋白质功能与酱香型白酒风味形成 | 第60-61页 |
| 2.4 强化高温大曲与普通高温大曲宏蛋白组鉴定结果的分析 | 第61-62页 |
| 第三节 本章小结 | 第62-65页 |
| 第三章 库德毕赤酵母和芽孢杆菌混合共发酵的研究 | 第65-87页 |
| 第一节 纯种发酵与混合共发酵的生物量变化 | 第65-70页 |
| 1.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 1.1.1 菌种 | 第65页 |
| 1.1.2 试剂 | 第65-66页 |
| 1.1.3 主要试剂和培养基的配制 | 第66页 |
| 1.2 实验方法 | 第66-67页 |
| 1.2.1 培养条件 | 第66-67页 |
| 1.2.2 生物量的测定 | 第67页 |
| 1.2.3 发酵过程PH值变化的测定 | 第67页 |
| 1.3 结果与分析 | 第67-70页 |
| 1.3.1 微生物的生物量变化 | 第67-68页 |
| 1.3.2 芽孢杆菌生长抑制的探究 | 第68-70页 |
| 第二节 库德毕赤酵母与芽孢杆菌混合共发酵风味物质的分析 | 第70-78页 |
| 2.1 主要仪器 | 第71页 |
| 2.2 实验方法 | 第71页 |
| 2.2.1 发酵液挥发性风味物质的测定 | 第71页 |
| 2.3 结果与分析 | 第71-78页 |
| 2.3.1 库德毕赤酵母与芽孢杆菌纯种发酵与混合共发酵风味物质的比较 | 第71-73页 |
| 2.3.2 风味物质的测定结果 | 第73-78页 |
| 第三节 库德毕赤酵母与芽孢杆菌混合共发酵的双向电泳图谱分析 | 第78-84页 |
| 3.1 实验材料 | 第79页 |
| 3.1.1 实验试剂和仪器 | 第79页 |
| 3.1.2 试剂的配制 | 第79页 |
| 3.2 实验方法 | 第79-80页 |
| 3.2.1 不同离心转速对菌体的聚沉影响 | 第79页 |
| 3.2.2 双向电泳样品的制备 | 第79-80页 |
| 3.2.3 双向电泳 | 第80页 |
| 3.2.4 双向电泳图谱的分析 | 第80页 |
| 3.3 结果与分析 | 第80-84页 |
| 3.3.1 库德毕赤酵母与地衣芽孢杆菌的离心聚沉差异分析 | 第80-81页 |
| 3.3.2 库德毕赤酵母纯种发酵与混合共发酵的蛋白组学分析 | 第81-84页 |
| 本章小结 | 第84-87页 |
| 第四章 总结与展望 | 第87-91页 |
| 4.1 高温大曲宏蛋白组双向电泳方法的建立 | 第87页 |
| 4.2 对普通高温大曲与强化高温大曲宏蛋白组的鉴定和比较分析 | 第87-88页 |
| 4.3 库德毕赤酵母与芽孢杆菌混合共发酵的研究 | 第88-89页 |
| 4.4 本文不足与展望 | 第89-91页 |
| 附录 | 第91-127页 |
| 参考文献 | 第127-133页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第133-135页 |
| 致谢 | 第135-137页 |
| 个人简历 | 第137-141页 |
