| 摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-19页 |
| 1 菊芋 | 第11-12页 |
| 2 菊糖 | 第12-14页 |
| 2.1 菊糖的来源 | 第12页 |
| 2.2 菊糖的结构 | 第12-13页 |
| 2.3 菊糖的理化特性 | 第13-14页 |
| 2.3.1 菊糖的水溶性 | 第13页 |
| 2.3.2 菊糖的甜度 | 第13页 |
| 2.3.3 菊糖溶液的黏度 | 第13页 |
| 2.3.4 菊糖的保湿性及稳定性 | 第13-14页 |
| 3 菊糖的生理功能 | 第14-15页 |
| 3.1 控制血脂 | 第14页 |
| 3.2 降低血糖 | 第14页 |
| 3.3 促进矿物质的吸收 | 第14-15页 |
| 3.4 促进肠道益生菌增殖 | 第15页 |
| 3.5 防便秘及治疗肥胖症 | 第15页 |
| 3.6 其他生理功能 | 第15页 |
| 4 菊糖的应用 | 第15-16页 |
| 5 菊糖的提取分离纯化 | 第16-17页 |
| 5.1 菊糖的提取 | 第16页 |
| 5.2 菊糖的纯化 | 第16-17页 |
| 6 菊糖的生产现状 | 第17页 |
| 7 研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 8 本论文研究的主要内容 | 第18-19页 |
| 第二章 菊芋菊糖的高效提取技术研究 | 第19-35页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 试验材料 | 第19页 |
| 1.2 试验试剂 | 第19页 |
| 1.3 试剂的配制 | 第19页 |
| 1.4 试验仪器 | 第19-20页 |
| 2 试验方法 | 第20-25页 |
| 2.1 还原糖标准曲线的制作 | 第20-21页 |
| 2.2 总糖标准曲线的制作 | 第21-22页 |
| 2.3 菊芋菊糖的测定 | 第22页 |
| 2.4 菊芋干粉的制备 | 第22页 |
| 2.5 菊芋菊糖的提取 | 第22-24页 |
| 2.5.1 菊糖热水浸提法提取工艺 | 第22-23页 |
| 2.5.2 菊糖超声辅助提取工艺 | 第23页 |
| 2.5.3 菊糖酶解辅助提取工艺 | 第23-24页 |
| 2.6 菊糖超声辅助提取工艺响应面设计及分析 | 第24-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-34页 |
| 3.1 菊糖热水浸提法单因素试验结果与分析 | 第25-27页 |
| 3.1.1 料液比对菊芋菊糖提取率的影响 | 第25-26页 |
| 3.1.2 提取温度对菊芋菊糖提取率的影响 | 第26页 |
| 3.1.3 提取时间对菊芋菊糖提取率的影响 | 第26-27页 |
| 3.2 菊糖超声辅助提取法单因素试验结果与分析 | 第27-29页 |
| 3.2.1 料液比对菊芋菊糖提取率的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.2 超声功率对菊芋菊糖提取率的影响 | 第28页 |
| 3.2.3 超声时间对菊芋菊糖提取率的影响 | 第28-29页 |
| 3.3 菊糖酶解辅助提取法单因素试验结果与分析 | 第29-31页 |
| 3.3.1 纤维素酶用量对菊芋菊糖提取率的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.2 果胶酶用量对菊芋菊糖提取率的影响 | 第30页 |
| 3.3.3 酶解时间对菊芋菊糖提取率的影响 | 第30-31页 |
| 3.4 菊糖超声辅助提取响应面试验结果与优化分析 | 第31-34页 |
| 3.4.1 试验结果与模型建立 | 第31-32页 |
| 3.4.2 方差分析与显著性检验 | 第32-33页 |
| 3.4.3 响应面分析与优化 | 第33-34页 |
| 4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 菊芋菊糖的分离纯化及纯度鉴定 | 第35-47页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 试验材料 | 第35页 |
| 1.2 试验试剂 | 第35页 |
| 1.3 试验仪器 | 第35-36页 |
| 2 试验方法 | 第36-38页 |
| 2.1 石灰乳磷酸法脱蛋白工艺 | 第36页 |
| 2.1.1 pH对菊糖粗提液中蛋白脱除率的影响 | 第36页 |
| 2.1.2 水浴温度对菊糖粗提液中蛋白脱除率的影响 | 第36页 |
| 2.1.3 水浴时间对菊糖粗提液中蛋白质去除率的影响 | 第36页 |
| 2.2 菊糖脱蛋白工艺响应面设计及分析 | 第36-37页 |
| 2.3 菊芋菊糖大孔树脂脱色工艺 | 第37页 |
| 2.3.1 大孔树脂的预处理 | 第37页 |
| 2.3.2 大孔树脂静态吸附脱色试验 | 第37页 |
| 2.4 菊芋菊糖醇沉工艺 | 第37页 |
| 2.5 菊芋菊糖纯化 | 第37-38页 |
| 2.5.1 凝胶柱的填装和平衡 | 第37-38页 |
| 2.5.2 菊芋菊糖上样及收集 | 第38页 |
| 2.6 菊芋菊糖纯度鉴定 | 第38页 |
| 2.6.1 紫外光谱检测 | 第38页 |
| 2.6.2 高效凝胶渗透色谱检测 | 第38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-46页 |
| 3.1 石灰乳磷酸法脱蛋白单因素试验结果与分析 | 第38-40页 |
| 3.1.1 pH对菊糖粗提液脱蛋白效果的影响 | 第38-39页 |
| 3.1.2 水浴温度对菊糖粗提液脱蛋白效果的影响 | 第39页 |
| 3.1.3 水浴时间对菊糖粗提液脱蛋白效果的影响 | 第39-40页 |
| 3.2 菊糖脱蛋白工艺响应面试验结果与优化分析 | 第40-43页 |
| 3.2.1 试验结果与模型建立 | 第40-41页 |
| 3.2.2 方差分析与显著性检验 | 第41-42页 |
| 3.2.3 响应面分析与优化 | 第42-43页 |
| 3.3 菊芋菊糖大孔树脂静态吸附脱色结果分析 | 第43页 |
| 3.4 菊芋菊糖Sephadex G-50葡聚糖凝胶柱层析结果与分析 | 第43-44页 |
| 3.5 菊芋菊糖纯度鉴定结果与分析 | 第44-46页 |
| 3.5.1 菊芋菊糖含量检测 | 第44-45页 |
| 3.5.2 紫外光谱检测结果与分析 | 第45页 |
| 3.5.3 高效凝胶渗透色谱分析结果 | 第45-46页 |
| 4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 菊芋菊糖的结构鉴定 | 第47-54页 |
| 1 材料 | 第47页 |
| 1.1 试验材料 | 第47页 |
| 1.2 试验仪器 | 第47页 |
| 2 试验方法 | 第47-48页 |
| 2.1 菊芋菊糖分子量的测定 | 第47页 |
| 2.2 菊芋菊糖结构分析 | 第47-48页 |
| 2.2.1 红外光谱分析 | 第47页 |
| 2.2.2 ~1H及~(13)C NMR波谱分析 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-53页 |
| 3.1 菊芋菊糖相对分子量的测定 | 第48页 |
| 3.2 菊芋菊糖红外光谱分析 | 第48-50页 |
| 3.3 菊芋菊糖NMR分析 | 第50-52页 |
| 3.3.1 ~1H NMR波谱分析 | 第50-51页 |
| 3.3.2 ~(13)C NMR波谱分析 | 第51-52页 |
| 3.4 菊芋菊糖结构分析 | 第52-53页 |
| 4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 菊芋菊糖抗氧化活性的研究 | 第54-58页 |
| 1 材料 | 第54页 |
| 1.1 试验材料 | 第54页 |
| 1.2 试验试剂 | 第54页 |
| 1.3 仪器 | 第54页 |
| 2 试验方法 | 第54-55页 |
| 2.1 DPPH自由基清除能力的测定 | 第54-55页 |
| 2.2 抗超氧阴离子自由基能力测定 | 第55页 |
| 2.3 羟自由基抑制能力测定 | 第55页 |
| 3 结果与分析 | 第55-57页 |
| 3.1 DPPH自由基清除能力的测定 | 第55-56页 |
| 3.2 抗超氧阴离子自由基能力测定 | 第56页 |
| 3.3 羟自由基抑制能力测定 | 第56-57页 |
| 4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第六章 菊芋菊糖促进乳酸菌增殖及协同抑菌活性的研究 | 第58-66页 |
| 1 材料 | 第58-59页 |
| 1.1 试验材料 | 第58页 |
| 1.2 试验菌株 | 第58页 |
| 1.3 培养基 | 第58页 |
| 1.4 试验仪器 | 第58-59页 |
| 2 试验方法 | 第59-60页 |
| 2.1 菌种的活化 | 第59页 |
| 2.2 菊芋菊糖对乳酸菌生长的影响 | 第59页 |
| 2.3 乳酸菌在基础培养基和改良培养基上生长曲线的测定 | 第59页 |
| 2.4 牛津杯法测定乳酸菌抑菌活性 | 第59-60页 |
| 3 结果与分析 | 第60-65页 |
| 3.1 菊芋菊糖对乳酸菌生长的影响 | 第60-61页 |
| 3.2 乳酸菌在改良培养基上生长曲线的测定 | 第61-62页 |
| 3.3 牛津杯法测定乳酸菌抑菌活性 | 第62-65页 |
| 4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第七章 菊芋菊糖对结肠癌细胞HT 29和Caco-2细胞的作用 | 第66-73页 |
| 1 材料 | 第66-67页 |
| 1.1 试验材料 | 第66页 |
| 1.2 试验试剂 | 第66-67页 |
| 1.3 试验仪器 | 第67页 |
| 1.4 试剂配制 | 第67页 |
| 2 试验方法 | 第67-69页 |
| 2.1 培养细胞 | 第67-68页 |
| 2.2 MTT法测菊芋菊糖对细胞生长率的影响 | 第68-69页 |
| 2.3 HT 29细胞荧光染色 | 第69页 |
| 3 结果与分析 | 第69-72页 |
| 3.1 MTT法测菊芋菊糖对细胞生存的影响 | 第69-71页 |
| 3.2 菊芋菊糖对HT 29细胞形态的影响 | 第71-72页 |
| 4 本章小结 | 第72-73页 |
| 全文讨论 | 第73-74页 |
| 全文结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| ABSTRACT | 第79-80页 |
| 硕士期间发表论文 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
