| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第9-16页 |
| 1.1 制备微胶囊的目的 | 第9页 |
| 1.2 制备微胶囊化方法 | 第9-12页 |
| 1.2.1 水相分离法 | 第10-11页 |
| 1.2.2 油相分离法 | 第11页 |
| 1.2.3 其他微胶囊化方法 | 第11-12页 |
| 1.3 益生菌微胶囊化的主要壁材 | 第12-14页 |
| 1.3.1 碳水化合物及其衍生物 | 第12-13页 |
| 1.3.2 植物胶类 | 第13页 |
| 1.3.3 蛋白质类 | 第13-14页 |
| 1.4 本课题的研究意义和内容 | 第14-16页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第14页 |
| 1.4.2 课题研究的主要内容 | 第14-15页 |
| 1.4.3 试验路线图 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-20页 |
| 2.1 试验材料 | 第16页 |
| 2.1.1 主要材料 | 第16页 |
| 2.1.2 主要培养基及试剂 | 第16页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第16页 |
| 2.2 试验方法 | 第16-17页 |
| 2.2.1 菌种培养及其样品准备 | 第16-17页 |
| 2.2.2 包埋菌液的制备 | 第17页 |
| 2.3 植物乳杆菌LIP-1微胶囊的制备 | 第17-18页 |
| 2.3.1 植物乳杆菌LIP-1微胶囊的制备方法 | 第17页 |
| 2.3.2 脱脂乳发酵酸度的确定 | 第17页 |
| 2.3.3 氯化钙浓度的确定 | 第17页 |
| 2.3.4 静置时间的确定 | 第17-18页 |
| 2.3.5 微胶囊最佳工艺优化 | 第18页 |
| 2.4 不同包埋方法对植物乳杆菌LIP-1微胶囊性能的影响 | 第18-19页 |
| 2.4.1 微胶囊的包埋率(ME)测定 | 第18页 |
| 2.4.2 微胶囊形态和粒径分析 | 第18-19页 |
| 2.4.3 模拟肠道(SIF)条件下微胶囊中LIP-1的释放数 | 第19页 |
| 2.4.4 模拟胃液(SGF)中微胶囊态和游离态细胞的存活数 | 第19页 |
| 2.4.5 植物乳杆菌LIP-1微胶囊存贮期的存活率 | 第19页 |
| 2.4.6 扫描电子显微镜观察超微结构 | 第19页 |
| 2.4.7 对壁材蛋白组成的进行凝胶电泳分析 | 第19页 |
| 2.5 数据分析 | 第19-20页 |
| 3 结果与讨论 | 第20-33页 |
| 3.1 条件选择 | 第20-23页 |
| 3.1.1 发酵酸度的确定 | 第20页 |
| 3.1.2 氯化钙浓度的确定 | 第20-21页 |
| 3.1.3 静置时间的确定 | 第21-22页 |
| 3.1.4 微胶囊制备工艺优化 | 第22-23页 |
| 3.1.5 微胶囊制备最佳工艺验证 | 第23页 |
| 3.2 不同包埋方法对植物乳杆菌LIP-1微胶囊性能的影响 | 第23-33页 |
| 3.2.1 微胶囊包埋率的比较 | 第23-25页 |
| 3.2.2 微胶囊形态、粒径及分布 | 第25-27页 |
| 3.2.3 微胶囊在模拟肠液(SIF)中释放性的比较 | 第27页 |
| 3.2.4 微胶囊在模拟胃液(SGF)中存活性的比较 | 第27-29页 |
| 3.2.5 不同存贮条件LIP-1微胶囊的存活 | 第29-30页 |
| 3.2.6 扫描电子显微镜的观察超微结构 | 第30-31页 |
| 3.2.7 对壁材蛋白组成的进行凝胶电泳分析 | 第31-33页 |
| 4 结论 | 第33-34页 |
| 致谢 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-40页 |
| 作者简介 | 第40页 |
