| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 1.1 ROS的产生及ROS对机体的影响 | 第13-14页 |
| 1.2 机体的防御系统 | 第14页 |
| 1.3 多酚类化合物的功能 | 第14-21页 |
| 1.3.1 抗氧化 | 第15-16页 |
| 1.3.2 抗增殖 | 第16-17页 |
| 1.3.3 抗辐射 | 第17页 |
| 1.3.4 抗衰老 | 第17-18页 |
| 1.3.5 抗菌 | 第18-19页 |
| 1.3.6 抗炎 | 第19-20页 |
| 1.3.7 其他 | 第20-21页 |
| 1.4 Nrf2-Keap1-ARE信号通路调控细胞抗氧化 | 第21页 |
| 1.5 p38/MAPK信号通路抑制细胞增殖、诱导细胞凋亡的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.6 羊肚菌的研究现状及立题依据 | 第22-25页 |
| 第二章 引言 | 第25-27页 |
| 2.1 立题依据及研究意义 | 第25页 |
| 2.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 2.3 预期结果 | 第26页 |
| 2.4 技术路线 | 第26-27页 |
| 第三章 体外模拟消化对羊肚菌抗氧化及抗增殖活性的影响 | 第27-43页 |
| 3.1 试验材料 | 第27-29页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.2.1 材料预处理 | 第29页 |
| 3.2.2 体外模拟消化 | 第29-30页 |
| 3.2.3 体外模拟消化液中多酚含量测定 | 第30页 |
| 3.2.4 体外模拟消化液氧自由基吸收能力（ORAC）测定 | 第30-32页 |
| 3.2.5 细胞培养 | 第32页 |
| 3.2.6 细胞毒性测定 | 第32-33页 |
| 3.2.7 细胞抗增殖活性测定 | 第33页 |
| 3.2.8 细胞抗氧化活性（CAA）测定 | 第33页 |
| 3.3 数据处理 | 第33页 |
| 3.4 结果与分析 | 第33-39页 |
| 3.4.1 体外模拟消化对多酚释放的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.2 体外模拟消化对氧自由基吸收能力（ORAC）的影响 | 第34页 |
| 3.4.3 体外模拟消化阶段多酚释放量与ORAC之间的相关性分析 | 第34-35页 |
| 3.4.4 体外模拟胃肠消化对细胞抗增殖活性的影响 | 第35-38页 |
| 3.4.5 体外模拟消化对HepG2细胞抗氧化活性（CAA）的影响 | 第38-39页 |
| 3.5 本章讨论 | 第39-40页 |
| 3.6 本章小结 | 第40-43页 |
| 第四章 羊肚菌多酚提取物细胞抗氧化活性研究 | 第43-57页 |
| 4.1 试验材料 | 第44-46页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第45-46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 4.2.1 材料预处理 | 第46-47页 |
| 4.2.2 羊肚菌多酚提取 | 第47页 |
| 4.2.3 细胞培养 | 第47页 |
| 4.2.4 细胞毒性测定 | 第47页 |
| 4.2.5 细胞抗氧化活性（CAA）测定 | 第47页 |
| 4.2.6 HepG2细胞内ROS及抗氧化相关物质的测定 | 第47页 |
| 4.2.7 HepG2细胞蛋白浓度的测定（BCA法测蛋白） | 第47-48页 |
| 4.2.8 HepG2细胞内抗氧化蛋白表达测定（蛋白免疫印迹） | 第48-50页 |
| 4.3 数据处理 | 第50页 |
| 4.4 结果与分析 | 第50-55页 |
| 4.4.1 羊肚菌游离酚提取物、结合酚提取物的细胞抗氧化能力测定 | 第50-51页 |
| 4.4.2 羊肚菌提取物对HepG2细胞内ROS及抗氧化物质的影响 | 第51-53页 |
| 4.4.3 羊肚菌游离酚提取物对HepG2细胞内抗氧化相关蛋白的影响 | 第53-54页 |
| 4.4.4 羊肚菌游离酚提取物通过Nrf2-Keap1-ARE抗氧化信号通路发挥抗氧化的作用机制 | 第54-55页 |
| 4.5 本章讨论 | 第55-56页 |
| 4.6 本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 羊肚菌多酚提取物抗增殖活性研究 | 第57-67页 |
| 5.1 试验材料 | 第57-59页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第57-58页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第58-59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 5.2.1 材料预处理 | 第59页 |
| 5.2.2 羊肚菌多酚提取 | 第59页 |
| 5.2.3 细胞培养 | 第59页 |
| 5.2.4 细胞毒性测定 | 第59页 |
| 5.2.5 细胞抗增殖活性测定 | 第59页 |
| 5.2.6 细胞形态观察 | 第59-60页 |
| 5.2.7 HepG2细胞内抗增殖相关酶活性的测定 | 第60页 |
| 5.2.8 HepG2细胞内蛋白浓度的测定（BCA法测蛋白） | 第60页 |
| 5.3 数据处理 | 第60页 |
| 5.4 结果与分析 | 第60-64页 |
| 5.4.1 羊肚菌游离酚提取物、结合酚提取物对HepG2细胞增殖作用的影响 | 第60-61页 |
| 5.4.2 羊肚菌游离酚提取物、结合酚提取物对Caco-2细胞增殖作用的影响 | 第61-63页 |
| 5.4.3 羊肚菌游离酚提取物对HepG2细胞内抗增殖相关酶活性的影响 | 第63-64页 |
| 5.5 本章讨论 | 第64-66页 |
| 5.6 本章小结 | 第66-67页 |
| 第六章 羊肚菌多酚提取物通过p38/MAPK信号通路抑制HepG2细胞增殖和诱导细胞凋亡机制 | 第67-77页 |
| 6.1 试验材料 | 第67-70页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第67-69页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第69-70页 |
| 6.2 实验方法 | 第70页 |
| 6.2.1 材料预处理 | 第70页 |
| 6.2.2 羊肚菌多酚提取 | 第70页 |
| 6.2.3 细胞培养 | 第70页 |
| 6.2.4 细胞毒性测定 | 第70页 |
| 6.2.5 细胞收集 | 第70页 |
| 6.2.6 HepG2细胞内抗增殖蛋白表达测定（蛋白免疫印迹） | 第70页 |
| 6.3 数据处理 | 第70-71页 |
| 6.4 结果与分析 | 第71-74页 |
| 6.4.1 羊肚菌游离酚提取物对抑制HepG2细胞增殖相关蛋白表达的影响 | 第71-73页 |
| 6.4.2 羊肚菌游离酚提取物对诱导HepG2细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第73-74页 |
| 6.4.3 羊肚菌游离酚提取物通过p38/MAPK信号传导通路抑制HepG2细胞增殖和诱导细胞凋亡的作用机制 | 第74页 |
| 6.5 本章讨论 | 第74-76页 |
| 6.6 本章小结 | 第76-77页 |
| 第七章 结论与展望 | 第77-79页 |
| 7.1 结论 | 第77-78页 |
| 7.2 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-91页 |
| 致谢 | 第91-93页 |
| 攻读硕士学位期间发表研究论文及参与科研情况 | 第93页 |
