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植物乳杆菌在冷冻干燥过程中生理损伤及保护策略的研究

摘要第6-8页
abstract第8-10页
第一章 引言第15-25页
    1.1 益生菌概述第15-17页
        1.1.1 益生菌的定义第15页
        1.1.2 益生菌的分类第15-16页
        1.1.3 益生菌的功能第16-17页
        1.1.4 植物乳杆菌概述第17页
    1.2 冷冻干燥概述第17-22页
        1.2.1 冷冻干燥简介第17-18页
        1.2.2 冷冻干燥过程第18-19页
        1.2.3 冷冻干燥生理损伤第19-20页
        1.2.4 影响冷冻干燥作用的因素第20-22页
        1.2.5 冷冻干燥中存在的问题第22页
    1.3 研究目的和意义第22-23页
    1.4 研究内容第23-25页
第二章 不同植物乳杆菌膜脂肪酸组成与其冷冻干燥存活率关系的探究第25-44页
    2.1 前言第25页
    2.2 材料与设备第25-26页
        2.2.1 菌株第25-26页
        2.2.2 培养基第26页
        2.2.3 主要材料与试剂第26页
        2.2.4 主要仪器与设备第26页
    2.3 实验方法第26-29页
        2.3.1 菌种活化及培养方法第26-27页
        2.3.2 系统发育树构建第27页
        2.3.3 生长曲线、迟滞期及比生长速率测定第27-28页
        2.3.4 细胞膜脂肪酸测定第28页
        2.3.5 冷冻、干燥及冷冻干燥存活率测定第28-29页
        2.3.6 Pearson线性相关系数第29页
    2.4 实验结果与讨论第29-43页
        2.4.1 进化树远近关系第29-30页
        2.4.2 生长曲线、迟滞期时间及比生长速率差异第30-33页
        2.4.3 细胞膜脂肪酸组成差异第33-37页
        2.4.4 冷冻存活率、干燥存活率、冷冻干燥存活率差异第37-41页
        2.4.5 Pearson线性相关关系建立第41-43页
    2.5 本章小结第43-44页
第三章 冷冻干燥过程中生理损伤原因解析第44-58页
    3.1 前言第44页
    3.2 材料与设备第44-45页
        3.2.1 菌株第44页
        3.2.2 培养基第44-45页
        3.2.3 主要材料与试剂第45页
        3.2.4 主要仪器与设备第45页
    3.3 实验方法第45-48页
        3.3.1 菌种活化及培养方法第45-46页
        3.3.2 样品准备及冷冻干燥过程第46页
        3.3.3 玻璃化转变温度和崩解温度测定第46页
        3.3.4 植物乳杆菌细胞膜完整性测定第46-47页
        3.3.5 植物乳杆菌细胞膜流动性测定第47页
        3.3.6 无细胞提取液制备第47页
        3.3.7 LDH的测定第47-48页
        3.3.8 其他酶活的测定第48页
        3.3.9 数据处理第48页
    3.4 实验结果与讨论第48-56页
        3.4.1 玻璃化转变温度和崩解温度第48-51页
        3.4.2 细胞膜完整性第51-52页
        3.4.3 细胞膜流动性第52-53页
        3.4.4 冷冻干燥对植物乳杆菌LDH的影响第53-55页
        3.4.5 冷冻干燥对植物乳杆菌PK的影响第55页
        3.4.6 冷冻干燥对植物乳杆菌ATP酶的影响第55-56页
    3.5 本章小结第56-58页
第四章 冷冻干燥过程中保护策略的研究第58-76页
    4.1 前言第58页
    4.2 材料与设备第58-60页
        4.2.1 菌株第59页
        4.2.2 培养基第59页
        4.2.3 主要材料与试剂第59-60页
        4.2.4 主要仪器与设备第60页
    4.3 实验方法第60-62页
        4.3.1 菌种活化及培养方法第60页
        4.3.2 脂肪酸的添加对存活率的影响第60页
        4.3.3 脂肪酸添加影响存活率的原因验证第60-61页
        4.3.4 不同单保护剂对存活率的影响第61页
        4.3.5 保护剂复配对存活率的影响第61页
        4.3.6 保护剂复配影响存活率的原因验证第61页
        4.3.7 冷冻干燥第61页
        4.3.8 冷冻温度对存活率的影响第61-62页
    4.4 实验结果与讨论第62-75页
        4.4.1 脂肪酸的添加对存活率的影响第62-63页
        4.4.2 脂肪酸添加对玻璃化转变温度和崩解温度的影响第63-64页
        4.4.3 脂肪酸添加对细胞膜完整性的影响第64页
        4.4.4 脂肪酸添加对细胞膜流动性的影响第64-65页
        4.4.5 脂肪酸添加对LDH比酶活力的影响第65-66页
        4.4.6 脂肪酸添加对PK比酶活力的影响第66-67页
        4.4.7 脂肪酸添加对ATP比酶活力的影响第67页
        4.4.8 不同单保护剂对存活率的影响第67-69页
        4.4.9 保护剂复配对存活率的影响第69-70页
        4.4.10 保护剂复配对玻璃化转变温度、崩解温度的影响第70-71页
        4.4.11 保护剂复配对细胞膜完整性的影响第71-72页
        4.4.12 保护剂复配对LDH比酶活力的影响第72-73页
        4.4.13 保护剂复配对PK比酶活力的影响第73页
        4.4.14 保护剂复配对ATP比酶活力的影响第73-74页
        4.4.15 冷冻温度对存活率的影响第74-75页
    4.5 本章小结第75-76页
第五章 结论与展望第76-78页
    5.1 总结第76-77页
    5.2 展望第77-78页
参考文献第78-84页
在读期间公开发表的论文和承担科研项目及取得成果第84-85页
致谢第85-86页

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