目录 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
英文缩略语及中文对照 | 第13-14页 |
第一章 绪论 | 第14-23页 |
1 鱼精蛋白概述 | 第14-17页 |
·鱼精蛋白的理化性质 | 第14-15页 |
·鱼精蛋白提取与纯化 | 第15页 |
·鱼精蛋白的抗菌特性 | 第15-16页 |
·鱼精蛋白的抑菌机理 | 第16页 |
·鱼精蛋白在食品中的应用 | 第16-17页 |
2 金黄色葡萄球菌概述 | 第17页 |
3 细菌生物膜概述 | 第17-21页 |
·生物膜的形成过程 | 第18-19页 |
·人工生物膜发生装置 | 第19页 |
·生物膜的检测技术 | 第19-20页 |
·生物膜的控制方法 | 第20页 |
·生物膜胞外聚合物 | 第20-21页 |
·细菌生物膜与食品安全 | 第21页 |
4 立题背景与意义 | 第21-22页 |
5 主要研究内容 | 第22-23页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜模型的构建 | 第22页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形态及活菌的影响 | 第22页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物胞外多糖的影响 | 第22页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜PIA表达和eDNA合成的影响 | 第22-23页 |
第二章 金黄色葡萄球菌生物膜模型的构建 | 第23-32页 |
1 实验材料与仪器 | 第23-25页 |
·菌株 | 第23页 |
·主要试剂与耗材 | 第23-24页 |
·常用缓冲液及其它试剂的配制 | 第24页 |
·仪器 | 第24-25页 |
2 实验方法 | 第25-27页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜形成能力的鉴定 | 第25页 |
·菌种复苏 | 第25页 |
·刚果红平板法定性生物膜形成菌株 | 第25页 |
·金黄色葡萄球菌静置生物膜模型的建立 | 第25-27页 |
·标准菌悬液制备 | 第25-26页 |
·盖玻片的清洗 | 第26页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜模型建立 | 第26页 |
·金黄色葡萄球菌黏附观察 | 第26页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜鉴定和观察 | 第26页 |
·连续稀释法测生物膜内活菌数 | 第26-27页 |
3 实验结果 | 第27-30页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜形成能力的鉴定 | 第27页 |
·金黄色葡萄球菌静置生物膜模型的建立 | 第27-30页 |
·金黄色葡萄球菌黏附观察 | 第27-28页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜鉴定和观察 | 第28-29页 |
·连续稀释法对生物膜内活菌数的测定 | 第29-30页 |
4 小结 | 第30页 |
5 讨论 | 第30-32页 |
第三章 鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形态和细菌数量的影响 | 第32-43页 |
1 实验材料与仪器 | 第32-34页 |
·菌株 | 第32页 |
·主要试剂与耗材 | 第32-33页 |
·常用缓冲液及其它试剂的配制 | 第33页 |
·仪器 | 第33-34页 |
2 实验方法 | 第34-37页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌MIC及MBC的测定 | 第34-35页 |
·标准菌悬液制备 | 第34页 |
·鱼精蛋白溶液配制 | 第34页 |
·抑菌实验 | 第34-35页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第35-37页 |
·标准菌悬液制备 | 第35页 |
·鱼精蛋白溶液的配制 | 第35页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形成的影响 | 第35-36页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜模型建立 | 第35页 |
·银染法观察金黄色葡萄球菌生物膜 | 第35页 |
·连续稀释法测生物膜内活菌数 | 第35-36页 |
·统计分析 | 第36页 |
·鱼精蛋白对成熟的金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第36-37页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜模型建立 | 第36页 |
·银染法观察金黄色葡萄球菌生物膜 | 第36页 |
·连续稀释法测生物膜内活菌数 | 第36页 |
·统计分析 | 第36-37页 |
3 实验结果 | 第37-41页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌MIC及MBC的测定 | 第37页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第37-41页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形成的影响 | 第37-39页 |
·银染法观察金黄色葡萄球菌生物膜 | 第37-39页 |
·连续稀释法测定生物膜内活菌数 | 第39页 |
·鱼精蛋白对成熟的金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第39-41页 |
·银染法观察金黄色葡萄球菌生物膜 | 第39-41页 |
·连续稀释法测定生物膜内活菌数 | 第41页 |
4 小结 | 第41-42页 |
5 讨论 | 第42-43页 |
第四章 鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜胞外多糖的影响 | 第43-61页 |
1 实验材料与仪器 | 第43-45页 |
·菌株 | 第43页 |
·主要试剂与耗材 | 第43-44页 |
·常用缓冲液及其它试剂的配制 | 第44页 |
·仪器 | 第44-45页 |
2 实验方法 | 第45-49页 |
·菌种复苏 | 第45页 |
·标准菌悬液制备 | 第45页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜胞外多糖的影响 | 第45-47页 |
·鱼精蛋白溶液的配制 | 第45页 |
·生物膜标本制备 | 第45-46页 |
·初始加入鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第45-46页 |
·鱼精蛋白对成熟金黄色葡萄球菌生物膜的影响 | 第46页 |
·生物膜中胞外多糖荧光染色 | 第46页 |
·荧光显微镜观察 | 第46页 |
·图像分析 | 第46页 |
·统计分析 | 第46-47页 |
·金黄色葡葡球菌生物膜胞外多糖的提取 | 第47-49页 |
·蒽酮法测定总糖含量标准曲线的制作 | 第47页 |
·生物膜标本制备 | 第47-48页 |
·初始加入鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形成的影响 | 第47-48页 |
·鱼精蛋白对成熟金黄色葡萄球生物膜的影响 | 第48页 |
·黏附金黄色葡萄球菌的菌量测定 | 第48页 |
·黏附金黄色葡萄球菌合成水溶性与水不溶性胞外多糖的测定 | 第48页 |
·黏附状态金黄色葡萄球菌产糖能力的计算 | 第48-49页 |
·统计学分析 | 第49页 |
3 结果与分析 | 第49-59页 |
·观察鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜胞外多糖的影响 | 第49-54页 |
·初始加入鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜形成胞外多糖的影响 | 第49-51页 |
·鱼精蛋白对培养不同时间的金黄色葡萄球菌生物膜胞外多糖的影响 | 第51-54页 |
·鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜水溶性及水不溶性胞外多糖的影响 | 第54-57页 |
·蒽酮法测定总糖含量标准曲线 | 第54页 |
·不同培养条件下金黄色葡萄球菌生物膜黏附菌的质量 | 第54-55页 |
·初始加入鱼精蛋白对黏附细菌产胞外多糖能力的影响 | 第55-57页 |
·初始加入鱼精蛋白对黏附细菌产水溶性胞外多糖能力的影响 | 第55-56页 |
·初始加入鱼精蛋白对黏附细菌产水不溶性胞外多糖能力的影响 | 第56-57页 |
·生物膜形成后加入鱼精蛋白对黏附细菌产胞外多糖的影响 | 第57-59页 |
·生物膜形成后加入鱼精蛋白对黏附细菌产水溶性胞外多糖能力的影响 | 第57-58页 |
·生物膜形成后加入鱼精蛋白对粘附细菌产水不溶性胞外多糖能力的影响 | 第58-59页 |
4 小结 | 第59-60页 |
5 讨论 | 第60-61页 |
第五章 鱼精蛋白对金黄色葡萄球菌生物膜PIA表达和eDNA分泌的影响 | 第61-70页 |
1 实验材料与仪器 | 第61-63页 |
·菌株 | 第61页 |
·主要试剂与耗材 | 第61-62页 |
·常用缓冲液及其它试剂的配制 | 第62-63页 |
·仪器 | 第63页 |
2 实验方法 | 第63-66页 |
·标准菌悬液的制备 | 第63页 |
·金黄色葡萄球菌生物膜培养 | 第63-64页 |
·PIA提取与检测 | 第64页 |
·eDNA提取与检测 | 第64-66页 |
·荧光扫描波长的确定 | 第64-65页 |
·标准曲线的绘制 | 第65页 |
·eDNA提取 | 第65-66页 |
·eDNA含量检测 | 第66页 |
·统计分析 | 第66页 |
3 结果 | 第66-69页 |
·鱼精蛋白对PIA表达的影响 | 第66-67页 |
·鱼精蛋白对eDNA分泌的影响 | 第67-69页 |
·荧光光度法测定eDNA含量标准曲线的绘制 | 第67-68页 |
·eDNA含量的测定 | 第68-69页 |
4 小结 | 第69页 |
5 讨论 | 第69-70页 |
第六章 总结与展望 | 第70-72页 |
1 总结 | 第70-71页 |
2 展望 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-79页 |
致谢 | 第79页 |