| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 主要符号表 | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 海参概述 | 第12-13页 |
| 1.2 海参内脏概述 | 第13-14页 |
| 1.3 海参多糖 | 第14-16页 |
| 1.4 海参多肽 | 第16-17页 |
| 1.4.1 抗氧化活性 | 第16页 |
| 1.4.2 抗疲劳 | 第16-17页 |
| 1.4.3 其他活性 | 第17页 |
| 1.5 海参皂苷 | 第17-18页 |
| 1.6 选题意义和研究内容 | 第18-20页 |
| 1.6.1 选题意义 | 第18-19页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 第2章 海参内脏蛋白水解条件的优化 | 第20-36页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 海参内脏前处理 | 第21页 |
| 2.2.2 酶活的测定 | 第21页 |
| 2.2.3 蛋白酶的筛选 | 第21页 |
| 2.2.4 水解度的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 清除DPPH自由基活性的测定 | 第22页 |
| 2.2.6 内脏酶解物制备工艺流程 | 第22页 |
| 2.2.7 单因素实验 | 第22页 |
| 2.2.8 多肽分子量的测定 | 第22页 |
| 2.2.9 水解产物的理化指标测定 | 第22-23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-35页 |
| 2.3.1 酶活力测定 | 第23-24页 |
| 2.3.2 最适用酶的筛选 | 第24页 |
| 2.3.3 酶解条件选择的单因素实验 | 第24-27页 |
| 2.3.4 响应面优化实验 | 第27-32页 |
| 2.3.5 水解产物DPPH清除活性测定 | 第32页 |
| 2.3.6 海参内脏水解产物的分子量分布 | 第32-34页 |
| 2.3.7 水解产物成分的测定 | 第34-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 海参内脏酶解产物抗氧化活性研究 | 第36-47页 |
| 3.1 实验材料、试剂和仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第37页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 体外抗氧化实验 | 第37页 |
| 3.2.2 体外抗氧化实验 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与分析 | 第38-46页 |
| 3.3.1 海参内脏酶解产物清除·OH活性 | 第38-39页 |
| 3.3.2 海参内脏酶解产物清除DPPH·活性 | 第39-40页 |
| 3.3.3 海参内脏酶解产物对小鼠体重的影响 | 第40页 |
| 3.3.4 海参内脏酶解产物对小鼠肝脏系数的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 海参内脏酶解产物对小鼠血清生化指标的影响 | 第41-44页 |
| 3.3.6 海参内脏酶解产物对小鼠肝脏生化指标的影响 | 第44-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第4章 海参内脏酶解产物抗疲劳活性研究 | 第47-55页 |
| 4.1 实验材料、试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 4.1.2 试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.3 仪器 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 小鼠分组与喂养 | 第48页 |
| 4.2.2 小鼠力竭游泳时间测定 | 第48页 |
| 4.2.3 小鼠各项生化指标的测定 | 第48-49页 |
| 4.2.4 数据统计 | 第49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-54页 |
| 4.3.1 小鼠体重 | 第49-50页 |
| 4.3.2 小鼠器官湿重指数 | 第50页 |
| 4.3.3 小鼠力竭游泳时间 | 第50-51页 |
| 4.3.4 血清LD含量 | 第51-52页 |
| 4.3.5 血清BUN含量 | 第52-53页 |
| 4.3.6 肝糖原含量 | 第53-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 结论与展望 | 第55-56页 |
| 5.1 结论 | 第55页 |
| 5.2 展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |