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S.THERMOPHILUS SP1.1营养素需求和高密度培养模式及其增殖机制的研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第1章 绪论第11-20页
    1.1 课题背景及研究目的和意义第11页
    1.2 乳酸菌化学合成培养基第11页
    1.3 高密度培养的限制因素第11-16页
        1.3.1 营养成分限制第12-14页
        1.3.2 代谢产物因素第14-15页
        1.3.3 培养条件限制第15-16页
    1.4 细胞分裂机制第16-18页
        1.4.1 细胞分裂环-Z 环形成第16-17页
        1.4.2 FtsZ 蛋白第17页
        1.4.3 青霉素结合蛋白第17-18页
    1.5 国内外文研究现状第18-19页
    1.6 本课题主要研究内容第19-20页
第2章 材料与方法第20-29页
    2.1 实验试剂及材料第20-21页
        2.1.1 实验菌株第20页
        2.1.2 实验试剂第20-21页
        2.1.3 实验仪器第21页
    2.2 化学合成培养基优化第21-24页
        2.2.1 培养基的配制第21-22页
        2.2.2 单因素实验水平选取第22-24页
        2.2.3 菌体生长曲线绘制第24页
    2.3 分段培养策略研究第24-25页
        2.3.1 变温培养对菌体浓度的影响第24-25页
        2.3.2 变 pH 培养对菌体浓度的影响第25页
        2.3.3 菌体活力的测定第25页
        2.3.4 菌体密度测定第25页
    2.4 青霉素结合蛋白与生长关系研究第25-28页
        2.4.1 提取膜蛋白第25页
        2.4.2 Pierce BCA Protein Assay Kit 测定蛋白浓度第25-26页
        2.4.3 S.thermophilus sp1.1 青霉素结合蛋白的鉴定第26页
        2.4.4 蛋白含量对荧光强度的影响第26-27页
        2.4.5 荧光青霉素加量对荧光强度的影响第27页
        2.4.6 不同生长阶段青霉素结合蛋白含量变化第27页
        2.4.7 SDS-PAGE 电泳测定膜总蛋白分子量第27-28页
        2.4.8 青霉素结合蛋白荧光标记凝胶电泳及荧光定量第28页
    2.5 实验数据处理及分析第28-29页
第3章 化学合成培养基优化第29-44页
    3.1 化学合成培养基与 MRS 培养基比较第29页
    3.2 组分单因素实验第29-33页
    3.3 Plackett-Burman 实验设计第33-36页
    3.4 最陡爬坡实验第36页
    3.5 响应面实验第36-43页
        3.5.1 响应面实验因素水平第36-37页
        3.5.2 响应面实验设计及结果第37-39页
        3.5.3 菌体密度响应面分析第39-43页
    3.6 本章小结第43-44页
第4章 营养成分必要性研究第44-50页
    4.1 单一因素扣除实验第44-46页
    4.2 多因素扣除实验第46-49页
    4.3 本章小结第49-50页
第5章 分段培养条件对菌体生长研究第50-58页
    5.1 变温培养研究第50-53页
        5.1.1 延滞期末期变温培养研究第50-52页
        5.1.2 对数期末期变温培养研究第52-53页
    5.2 变 pH 培养培养第53-57页
        5.2.1 延滞期末期变 pH 培养研究第54-55页
        5.2.2 对数期末期变 pH 培养研究第55-57页
    5.3 本章小结第57-58页
第6章 青霉素结合蛋白与菌体生长关系第58-67页
    6.1 荧光青霉素标记方法可行性研究第58-62页
        6.1.1 膜蛋白提取第58-59页
        6.1.2 S.thermophilus sp1.1 青霉素结合蛋白的鉴定第59-60页
        6.1.3 蛋白含量对荧光强度的影响第60-61页
        6.1.4 荧光青霉素加量对成像的影响第61-62页
    6.2 不同生长阶段青霉素结合蛋白含量变化第62-65页
    6.3 本章小结第65-67页
结论第67-69页
参考文献第69-76页
附录第76-80页
    附录 1第76-78页
    附录 2第78-80页
致谢第80页

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