| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1.1 蓝细菌概述 | 第8-10页 |
| 1.1.1 蓝细菌简介 | 第8页 |
| 1.1.2 蓝细菌抗逆性机理的研究 | 第8-10页 |
| 1.2 蓝细菌抗酸性机理的研究 | 第10-12页 |
| 1.2.1 蓝细菌抗酸性机理的研究背景 | 第10-11页 |
| 1.2.2 蓝细菌抗酸性机理的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.3 双组份信号转导系统 | 第12-14页 |
| 1.3.1 双组份系统组成 | 第12页 |
| 1.3.2 双组份系统的调控功能 | 第12-14页 |
| 1.4 功能基因组学 | 第14-18页 |
| 1.4.1 转录组学 | 第14-15页 |
| 1.4.2 蛋白质组学 | 第15-16页 |
| 1.4.3 代谢组学 | 第16-17页 |
| 1.4.4 整合的功能组学 | 第17-18页 |
| 1.5 本文研究的主要内容 | 第18-19页 |
| 第二章 酸胁迫相关的双组分应答调控蛋白的鉴定 | 第19-31页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第20-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.2 实验结果与讨论 | 第25-30页 |
| 2.2.1 氯霉素抗性片段的验证 | 第25页 |
| 2.2.2 slr1909基因上下游同源臂的验证 | 第25-26页 |
| 2.2.3 融合PCR产物验证 | 第26-27页 |
| 2.2.4 菌落PCR验证突变株 | 第27页 |
| 2.2.5 酸胁迫下突变株与野生株生长速率的差异 | 第27-30页 |
| 2.3 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 蛋白组技术分析酸胁迫集胞藻中slr1909的调控机制 | 第31-48页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第31-34页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 3.2 实验结果与讨论 | 第34-47页 |
| 3.2.1 菌株的生长情况 | 第34-35页 |
| 3.2.2 蛋白组学分析概况 | 第35页 |
| 3.2.3 酸胁迫对野生株和突变株的影响 | 第35-45页 |
| 3.2.4 Slr1909介导的酸性调控网络 | 第45-47页 |
| 3.3 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 RT-qPCR对蛋白组数据的验证 | 第48-55页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第48-52页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48-50页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.2 实验结果与讨论 | 第52-54页 |
| 4.2.1 RNA浓度测定及质量鉴定 | 第52页 |
| 4.2.2 RT-qPCR结果分析 | 第52-54页 |
| 4.2.3 Slr1909介导的独立的调控网络 | 第54页 |
| 4.3 小结 | 第54-55页 |
| 第五章 基于GC-MS的代谢组学分析 | 第55-62页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第55-57页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第55-56页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第56-57页 |
| 5.2 实验结果与讨论 | 第57-60页 |
| 5.2.1 Slr1909介导的酸调控网络代谢组学主成分分析 | 第57-59页 |
| 5.2.2 Slr1909调控的显著性变化的化合物的鉴定 | 第59-60页 |
| 5.3 小结 | 第60-62页 |
| 第六章 结论与展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
