| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 羊肚菌生物学特性 | 第12-19页 |
| 1.1.1 羊肚菌的形态特征 | 第12页 |
| 1.1.2 羊肚菌的化学成分 | 第12-15页 |
| 1.1.3 羊肚菌的生物学功能 | 第15-18页 |
| 1.1.4 羊肚菌发酵培养 | 第18-19页 |
| 1.2 多酚氧化酶PPO概述及研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3 过氧化物酶POD概述及研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4 超氧化物歧化酶SOD概述及研究进展 | 第21-24页 |
| 1.4.1 SOD的分类 | 第22页 |
| 1.4.2 SOD的作用机理 | 第22-23页 |
| 1.4.3 SOD的活性测定 | 第23页 |
| 1.4.4 SOD的应用 | 第23-24页 |
| 1.5 食用菌SOD性质研究进展 | 第24-25页 |
| 1.6 本课题研究目的及研究内容 | 第25-26页 |
| 第二章 黑脉羊肚菌子实体PPO、POD、SOD三种酶的性质研究 | 第26-50页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第26页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 试验方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 粗酶液的性质测定 | 第27-28页 |
| 2.2.2 粗酶液的酶学性质 | 第28-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-47页 |
| 2.3.1 黑脉羊肚菌PPO的酶学性质 | 第32-37页 |
| 2.3.2 黑脉羊肚菌POD的酶学性质 | 第37-42页 |
| 2.3.3 黑脉羊肚菌SOD的酶学性质 | 第42-47页 |
| 2.4 结论 | 第47-50页 |
| 第三章 黑脉羊肚菌子实体中SOD的提取及酶学性质研究 | 第50-68页 |
| 3.1 试验材料与仪器 | 第50页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 3.1.2 主要试验仪器 | 第50页 |
| 3.2 试验方法 | 第50-54页 |
| 3.2.1 SOD粗酶液的提取与测定 | 第50-52页 |
| 3.2.2 提取条件对黑脉羊肚菌SOD提取效果的影响 | 第52页 |
| 3.2.3 SOD粗酶液的初步纯化 | 第52-53页 |
| 3.2.4 SOD-A酶学性质研究 | 第53-54页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第54-66页 |
| 3.3.1 邻苯三酚自氧化法测定的影响因素 | 第54-57页 |
| 3.3.2 蛋白含量的测定 | 第57页 |
| 3.3.3 提取条件对黑脉羊肚菌SOD提取效果的影响 | 第57-60页 |
| 3.3.4 SOD粗酶液的初步纯化 | 第60-63页 |
| 3.3.5 黑脉羊肚菌SOD初步纯化的结果 | 第63-64页 |
| 3.3.6 经初步纯化后的SOD-A酶学性质测定 | 第64-66页 |
| 3.4 结论 | 第66-68页 |
| 第四章 黑脉羊肚菌液体发酵培养胞外产SOD的研究 | 第68-78页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第68页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第68页 |
| 4.1.2 试验仪器 | 第68页 |
| 4.2 试验方法 | 第68-70页 |
| 4.2.1 培养基配制 | 第68-69页 |
| 4.2.2 接种与培养 | 第69页 |
| 4.2.3 SOD的提取测定 | 第69页 |
| 4.2.4 菌丝体湿重的测定 | 第69页 |
| 4.2.5 发酵条件对产胞外SOD的影响 | 第69-70页 |
| 4.2.6 添加激素IAA对产胞外SOD的影响 | 第70页 |
| 4.2.7 添加金属离子对胞外产SOD酶的影响 | 第70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-75页 |
| 4.3.1 培养温度对SOD活性的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.2 初始pH对SOD活性的影响 | 第71-72页 |
| 4.3.3 培养时间对SOD活性的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.4 激素对SOD酶活的影响 | 第73-74页 |
| 4.3.5 金属离子对SOD酶活的影响 | 第74-75页 |
| 4.3.6 发酵培养SOD的效果 | 第75页 |
| 4.4 结论 | 第75-78页 |
| 第五章 结论 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 附录 | 第91页 |
