| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 0 引言 | 第14-37页 |
| ·海带的研究概述 | 第14-16页 |
| ·岩藻聚糖硫酸酯的研究进展 | 第16-27页 |
| ·岩藻聚糖硫酸酯酶的研究进展 | 第27-31页 |
| ·酶解过程模拟及优化技术 | 第31-35页 |
| ·本文研究内容 | 第35-37页 |
| 第一章 产 FUCenzyme 微生物的筛选及鉴定 | 第37-56页 |
| ·材料与设备 | 第37-39页 |
| ·原料 | 第37页 |
| ·培养基 | 第37-38页 |
| ·药品与试剂 | 第38页 |
| ·试剂配制 | 第38页 |
| ·主要仪器设备 | 第38-39页 |
| ·实验方法 | 第39-46页 |
| ·菌种筛选 | 第39-40页 |
| ·菌种产酶方式判断 | 第40页 |
| ·菌种产酶能力验证 | 第40-41页 |
| ·菌种生理生化性质研究 | 第41-43页 |
| ·16s rDNA 鉴定及系统发育树的构建 | 第43页 |
| ·多糖阴离子交换柱层析纯化 | 第43-44页 |
| ·多糖化学成分分析方法 | 第44页 |
| ·HDFuc 含量的测定 | 第44页 |
| ·FUCenzyme 酶活力测定方法 | 第44-45页 |
| ·统计学分析 | 第45-46页 |
| ·实验结果与讨论 | 第46-55页 |
| ·HDFuc 的 QFF 柱层析纯化 | 第46-47页 |
| ·菌种筛选 | 第47-50页 |
| ·RC2 产酶能力的确认 | 第50-53页 |
| ·RC2 形态及生理生化性质分析 | 第53页 |
| ·RC2 菌种鉴定结果 | 第53-55页 |
| ·本章总结 | 第55-56页 |
| 第二章 RC2 发酵产酶条件的优化 | 第56-69页 |
| ·材料与设备 | 第56-57页 |
| ·原料与试剂 | 第56页 |
| ·主要仪器设备 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57-60页 |
| ·基本培养条件 | 第57页 |
| ·产酶培养基配方优化 | 第57-58页 |
| ·RC2 产酶条件研究 | 第58-59页 |
| ·RC2 最优条件下的生长和产酶曲线 | 第59页 |
| ·5L 发酵罐产酶试验 | 第59页 |
| ·菌体生物量测定方法 | 第59页 |
| ·酶活力测定方法 | 第59页 |
| ·统计学分析 | 第59-60页 |
| ·实验结果与讨论 | 第60-68页 |
| ·RC2 的发酵培养基配方优化 | 第60-64页 |
| ·RC2 的发酵产酶条件研究 | 第64-67页 |
| ·最优条件下 RC2 的生长和产酶曲线 | 第67页 |
| ·5L 发酵罐的扩大产酶试验结果 | 第67-68页 |
| ·本章总结 | 第68-69页 |
| 第三章 FUCenzyme 的分离纯化及酶学性质研究 | 第69-86页 |
| ·材料与设备 | 第69-71页 |
| ·原料与试剂 | 第69页 |
| ·试剂配制 | 第69-70页 |
| ·主要仪器设备 | 第70-71页 |
| ·实验方法 | 第71-75页 |
| ·粗酶液的制备 | 第71页 |
| ·酶的分离纯化 | 第71-72页 |
| ·SDS-PAGE 纯度鉴定 | 第72页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第72-73页 |
| ·酶活力测定方法 | 第73页 |
| ·酶学性质研究 | 第73-74页 |
| ·酶促反应过程监测 | 第74页 |
| ·酶切方式的初步判断 | 第74-75页 |
| ·统计学分析 | 第75页 |
| ·实验结果与讨论 | 第75-84页 |
| ·酶的离子交换层析 | 第75-76页 |
| ·酶的 SDS-PAGE 纯度检测及分子量测定 | 第76页 |
| ·酶的纯化步骤及结果 | 第76-77页 |
| ·酶学性质研究结果 | 第77-82页 |
| ·酶促反应过程的还原糖含量监测 | 第82-83页 |
| ·酶切方式的初步判断 | 第83-84页 |
| ·本章总结 | 第84-86页 |
| 第四章 酶解产物抗氧化活性预测系统的建立及寻优 | 第86-107页 |
| ·材料与设备 | 第86-87页 |
| ·原料与试剂 | 第86-87页 |
| ·试剂配制 | 第87页 |
| ·主要仪器设备 | 第87页 |
| ·实验方法 | 第87-97页 |
| ·酶解条件 | 第87页 |
| ·˙OH 清除率测定 | 第87-88页 |
| ·O2˙-清除率测定 | 第88-89页 |
| ·DPPH˙清除率测定 | 第89页 |
| ·还原能力的测定 | 第89页 |
| ·金属离子螯合能力的测定 | 第89-90页 |
| ·利用 BP 网络模型模拟酶解过程设计 | 第90-95页 |
| ·可视化预测系统的建立 | 第95-97页 |
| ·遗传算法的寻优设计 | 第97页 |
| ·实验结果与讨论 | 第97-106页 |
| ·BP 网络模型的建立与检验 | 第97-101页 |
| ·可视化活性预测系统的建立 | 第101-102页 |
| ·应用 GA 对酶解条件进行寻优 | 第102-106页 |
| ·本章总结 | 第106-107页 |
| 第五章 酶解产物的体内抗氧化活性研究 | 第107-118页 |
| ·材料与设备 | 第107-108页 |
| ·原料与试剂 | 第107-108页 |
| ·试剂配制 | 第108页 |
| ·主要仪器设备 | 第108页 |
| ·实验方法 | 第108-113页 |
| ·酶解产物的制备 | 第108页 |
| ·实验分组与动物模型的建立 | 第108-109页 |
| ·血清及组织样本的制备 | 第109页 |
| ·脏器指数的测定 | 第109页 |
| ·组织样本的蛋白质含量测定 | 第109页 |
| ·血清、肝脏匀浆清除˙OH 能力的测定 | 第109-110页 |
| ·血清、肝脏匀浆 MDA 含量的测定 | 第110页 |
| ·血清、肝脏匀浆 SOD 活性的测定 | 第110-111页 |
| ·血清、肝脏匀浆 CAT 活性的测定 | 第111-112页 |
| ·血清、肝脏匀浆 GSH-Px 活性的测定 | 第112页 |
| ·统计学分析 | 第112-113页 |
| ·实验结果与讨论 | 第113-116页 |
| ·小鼠的脏器指数 | 第113页 |
| ·小鼠血清和肝脏的清除˙OH 能力 | 第113-114页 |
| ·小鼠血清和肝脏的 MDA 含量 | 第114页 |
| ·小鼠血清和肝脏的 SOD 活性 | 第114-115页 |
| ·小鼠血清和肝脏的 CAT 活性 | 第115页 |
| ·小鼠血清和肝脏的 GSH-Px 活性 | 第115-116页 |
| ·讨论 | 第116页 |
| ·本章总结 | 第116-118页 |
| 总结与展望 | 第118-121页 |
| 参考文献 | 第121-132页 |
| 附录 | 第132-142页 |
| 个人简历、发表论文及研究成果 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |