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大黄鱼鱼卵磷脂组及其磷脂酰胆碱对HepG2细胞增殖效应的研究

摘要第8-10页
Abstact第10-12页
第一章 文献综述第13-31页
    1.1 大黄鱼资源综合利用现状第13-15页
        1.1.1 大黄鱼资源及利用现状第13页
        1.1.2 大黄鱼鱼卵的营养价值第13-14页
        1.1.3 大黄鱼鱼卵加工现状第14-15页
    1.2 磷脂及磷脂酰胆碱概述第15-19页
        1.2.1 磷脂的结构及组成第15-16页
        1.2.2 磷脂的来源及特点第16-18页
        1.2.3 磷脂酰胆碱的理化性质第18-19页
    1.3 磷脂酰胆碱的分析方法第19-26页
        1.3.1 脂质组学的研究现状第19-21页
        1.3.2 磷脂酰胆碱的分离纯化方法第21-24页
        1.3.3 磷脂酰胆碱的分析检测方法第24-26页
    1.4 磷脂酰胆碱的生理功能第26-29页
        1.4.1 降血脂作用和预防心血管疾病第26-27页
        1.4.2 参与细胞膜组成,改善脂类代谢第27-28页
        1.4.3 改善脑及神经功能,预防老年性痴呆第28页
        1.4.4 作为抗氧化剂,延缓机体衰老第28页
        1.4.5 乳化作用第28-29页
    1.5 本课题的研究目的和意义第29-30页
    1.6 本课题的研究内容第30-31页
第二章 大黄鱼各部位磷脂组分及其脂肪酸组成分析第31-43页
    2.1 引言第31页
    2.2 材料与设备第31-32页
        2.2.1 试验材料第31页
        2.2.2 主要仪器设备第31-32页
    2.3 试验方法第32-34页
        2.3.1 原料预处理第32页
        2.3.2 大黄鱼各部位水分含量的测定第32页
        2.3.3 大黄鱼各部位总脂质的提取第32页
        2.3.4 大黄鱼各部位磷脂的制备第32-33页
        2.3.5 大黄鱼各部位磷脂含量的测定第33页
        2.3.6 大黄鱼各部位磷脂组分分析第33-34页
        2.3.7 大黄鱼各部位磷脂脂肪酸组成分析第34页
        2.3.8 数据处理第34页
    2.4 结果与分析第34-41页
        2.4.1 大黄鱼各部位磷脂含量的测定结果第34-36页
        2.4.2 大黄鱼各部位磷脂组分分析第36-39页
        2.4.3 大黄鱼各部位磷脂脂肪酸组成分析第39-41页
    2.5 小结第41-43页
第三章 大黄鱼鱼卵磷脂分子种鉴定与解析第43-56页
    3.1 引言第43页
    3.2 材料与设备第43-44页
        3.2.1 试验材料第43-44页
        3.2.2 主要仪器设备第44页
    3.3 试验方法第44-45页
        3.3.1 样品预处理第44页
        3.3.2 液相检测条件第44-45页
        3.3.3 质谱检测条件第45页
    3.4 试验结果第45-54页
        3.4.1 大黄鱼鱼卵磷脂分子种鉴定第45-46页
        3.4.2 大黄鱼鱼卵磷脂成分的质谱鉴定第46-54页
        3.4.3 大黄鱼鱼卵磷脂组成第54页
    3.5 小结第54-56页
第四章 柱层析法分离纯化大黄鱼鱼卵磷脂酰胆碱第56-67页
    4.1 引言第56页
    4.2 材料与设备第56-57页
        4.2.1 试验材料第56页
        4.2.2 主要仪器设备第56-57页
    4.3 试验方法第57-58页
        4.3.1 大黄鱼鱼卵粗磷脂的制备第57页
        4.3.2 层析柱的制备第57页
        4.3.3 上样和洗脱第57-58页
        4.3.4 高效液相色谱测定Roe-PC纯度第58页
        4.3.5 PC标准曲线的制作第58页
        4.3.6 大黄鱼Roe-PC回收率的计算第58页
        4.3.7 大黄鱼Roe-PC脂肪酸组成分析第58页
        4.3.8 数据分析第58页
    4.4 结果与分析第58-65页
        4.4.1 固定相种类对Roe-PC纯化效果的影响第58-59页
        4.4.2 固定相粒度对Roe-PC纯化效果的影响第59-60页
        4.4.3 流动相流速对Roe-PC纯化效果的影响第60-61页
        4.4.4 洗脱剂配比对Roe-PC纯化效果的影响第61-62页
        4.4.5 上载量对Roe-PC纯化效果的影响第62-63页
        4.4.6 Roe-PC的纯度及回收率第63-64页
        4.4.7 Roe-PC的脂肪酸组成分析第64-65页
        4.4.8 Roe-PC与鱼卵粗磷脂的理化性质第65页
    4.5 小结第65-67页
第五章 Roe-PC脂质体对HepG2细胞的增殖效应初步探究第67-74页
    5.1 引言第67-68页
    5.2 材料与设备第68页
        5.2.1 试验材料第68页
        5.2.2 主要仪器设备第68页
    5.3 试验方法第68-70页
        5.3.1 DMEM培养液的配置第68页
        5.3.2 HepG2细胞的培养第68-69页
        5.3.3 Roe-PC脂质体的制备及形态观察第69-70页
        5.3.4 细胞存活率MTT的测定第70页
        5.3.5 Roe-PC脂质体对HepG2细胞生长的影响第70页
        5.3.6 数据分析第70页
    5.4 结果与分析第70-73页
        5.4.1 Reo-PC脂质体的形态学观察第70-71页
        5.4.2 Roe-PC脂质体对HepG2细胞生长的影响第71-73页
    5.5 小结第73-74页
结论与展望第74-76页
参考文献第76-86页
硕士期间发表的论文第86-87页
致谢第87-88页

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