| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-27页 |
| 1．1 CLA的化学性质 | 第10-11页 |
| 1．2 CLA的天然来源 | 第11页 |
| 1．3 CLA的研究进展 | 第11-12页 |
| 1．4 CLA的生理功能 | 第12-19页 |
| 1．4．1 CLA的抗癌作用 | 第12-14页 |
| 1．4．2 CLA的抗动脉粥样硬化功能 | 第14页 |
| 1．4．3 CLA对机体脂肪的作用 | 第14-17页 |
| 1．4．4 CLA改善Ⅱ型糖尿病的代谢参数 | 第17-18页 |
| 1．4．5 CLA的免疫调节作用 | 第18页 |
| 1．4．6 CLA对骨骼的影响 | 第18-19页 |
| 1．4．7 CLA的营养再分配作用 | 第19页 |
| 1．5 CLA的代谢 | 第19页 |
| 1．6 CLA的生成 | 第19-24页 |
| 1．6．1 反刍动物体内CLA的生成 | 第19-20页 |
| 1．6．2 CLA的化学异构化生成 | 第20-22页 |
| 1．6．3 体外微生物转化生成CLA | 第22-24页 |
| 1．7 CLA 的分析检测 | 第24-25页 |
| 1．8 研究目标、内容和技术路线 | 第25-27页 |
| 1．8．1 研究目标 | 第25页 |
| 1．8．2 研究内容 | 第25页 |
| 1．8．3 本课题研究采取的技术路线 | 第25-27页 |
| 第二章 高产CLA Lactobacillus plantarum的分离与鉴定 | 第27-36页 |
| 2．1 材料与方法 | 第27-33页 |
| 2．1．1 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2．1．2 主要试剂 | 第27-28页 |
| 2．1．3 培养基 | 第28页 |
| 2．1．4 实验方法 | 第28-33页 |
| 2．2 结果与讨论 | 第33-35页 |
| 2．2．1 产CLA乳酸菌的筛选 | 第33页 |
| 2．2．2 产CLA乳酸菌属的鉴定 | 第33-35页 |
| 2．2．3 产CLA乳酸菌种的鉴定 | 第35页 |
| 2．3 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 高产CLA Lactobacillus plantarum的诱变选育及发酵条件优化 | 第36-54页 |
| 3．1 材料与方法 | 第36-41页 |
| 3．1．1 菌种 | 第36页 |
| 3．1．2 主要仪器设备 | 第36页 |
| 3．1．3 主要试剂 | 第36-37页 |
| 3．1．4 培养基 | 第37页 |
| 3．1．5 诱变方法 | 第37-39页 |
| 3．1．6 分析方法 | 第39页 |
| 3．1．7 培养基组成的优化 | 第39-40页 |
| 3．1．8 发酵条件的优化 | 第40页 |
| 3．1．9 菌种的保存 | 第40页 |
| 3．1．10 本章的研究内容、目标和技术路线 | 第40-41页 |
| 3．2 结果与分析 | 第41-53页 |
| 3．2．1 出发菌的生长曲线 | 第41页 |
| 3．2．2 诱变条件的选择 | 第41-42页 |
| 3．2．3 诱变后的发酵实验 | 第42-43页 |
| 3．2．4 培养基组成的优化实验 | 第43-49页 |
| 3．2．5 发酵条件的优化实验 | 第49-53页 |
| 3．3 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 Lactobacillus plantarum发酵转化LA生成CLA动力学研究 | 第54-65页 |
| 4．1 材料与方法 | 第54-56页 |
| 4．1．1 菌种 | 第54页 |
| 4．1．2 主要仪器设备 | 第54页 |
| 4．1．3 主要试剂 | 第54-55页 |
| 4．1．4 培养基 | 第55页 |
| 4．1．5 LA的乳化分散和过滤除菌 | 第55页 |
| 4．1．6 种子培养方法 | 第55页 |
| 4．1．7 5L罐发酵培养方法 | 第55页 |
| 4．1．8 分批发酵动力学模型研究方法 | 第55-56页 |
| 4．1．9 分析方法 | 第56页 |
| 4．2 结果与分析 | 第56-63页 |
| 4．2．1 CLA发酵过程动力学曲线 | 第56-57页 |
| 4．2．2 CLA生成速率分析 | 第57-58页 |
| 4．2．3 CLA分批发酵动力学模型的建立与分析 | 第58-63页 |
| 4．3 本章小结 | 第63-65页 |
| 第五章 Lactobacillus plantarum洗涤细胞转化LA生成CLA的研究 | 第65-78页 |
| 5．1 实验材料与方法 | 第65-68页 |
| 5．1．1 菌种 | 第65页 |
| 5．1．2 主要仪器设备 | 第65页 |
| 5．1．3 主要试剂 | 第65-66页 |
| 5．1．4 培养基 | 第66页 |
| 5．1．5 细胞培养和洗涤细胞的制备 | 第66页 |
| 5．1．6 洗涤细胞转化LA生成CLA的反应条件 | 第66-67页 |
| 5．1．7 CLA的检测 | 第67-68页 |
| 5．2 结果与分析 | 第68-77页 |
| 5．2．1 氧的影响 | 第68-69页 |
| 5．2．2 反应温度的影响 | 第69页 |
| 5．2．3 pH的影响 | 第69-70页 |
| 5．2．4 LA浓度的影响 | 第70页 |
| 5．2．5 细胞浓度的影响 | 第70-71页 |
| 5．2．6 正交试验优化洗涤细胞转化LA生成CLA的条件 | 第71-73页 |
| 5．2．7 L．plantarum LT2-6洗涤细胞转化LA生成CLA时间进程曲线 | 第73-74页 |
| 5．2．8 产物脂肪酸甲酯的红外光谱 | 第74页 |
| 5．2．9 产物脂肪酸甲酯的气相色谱 | 第74-77页 |
| 5．3 本章小结 | 第77-78页 |
| 第六章 亚油酸异构酶的分离纯化和酶学性质研究 | 第78-92页 |
| 6．1 材料与方法 | 第78-83页 |
| 6．1．1 菌种 | 第78页 |
| 6．1．2 主要仪器设备 | 第78-79页 |
| 6．1．3 主要试剂 | 第79页 |
| 6．1．4 培养基 | 第79页 |
| 6．1．5 亚油酸异构酶分离纯化步骤和方法 | 第79-81页 |
| 6．1．6 蛋白质含量的测定 | 第81页 |
| 6．1．7 亚油酸异构酶活力的测定 | 第81页 |
| 6．1．8 酶纯度和酶分子量的检测 | 第81-82页 |
| 6．1．9 亚油酸异构酶酶学性质研究 | 第82-83页 |
| 6．2 结果与讨论 | 第83-91页 |
| 6．2．1 亚油酸异构酶分离纯化 | 第83-86页 |
| 6．2．2 亚油酸异构酶酶学性质 | 第86-91页 |
| 6．3 本章小结 | 第91-92页 |
| 第七章 提高发酵牛乳CLA生成量的试验研究 | 第92-107页 |
| 7．1 材料与方法 | 第92-95页 |
| 7．1．1 菌种 | 第92页 |
| 7．1．2 主要仪器设备 | 第92-93页 |
| 7．1．3 主要试剂 | 第93页 |
| 7．1．4 实验方法 | 第93-95页 |
| 7．2 结果与讨论 | 第95-104页 |
| 7．2．1 部分商品发酵牛乳的CLA含量 | 第95页 |
| 7．2．2 诱导培养对CLA生成的影响 | 第95-96页 |
| 7．2．3 氧对发酵牛乳CLA生成的影响 | 第96页 |
| 7．2．4 振荡对发酵牛乳CLA生成的影响 | 第96-97页 |
| 7．2．5 温度对发酵牛乳CLA生成的影响 | 第97页 |
| 7．2．6 几种添加糖对L．plantarum LT2-6生长和CLA生成的影响 | 第97-98页 |
| 7．2．7 几种氮源对L．plantarum LT2-6生长和CLA生成的影响 | 第98-99页 |
| 7．2．8 LA浓度对L．plantarum LT2-6生长和CLA生成的影响 | 第99-100页 |
| 7．2．9 牛乳发酵过程动力学分析 | 第100-102页 |
| 7．2．10 缓冲液对发酵牛乳pH和CLA生成的影响 | 第102-103页 |
| 7．2．11 发酵牛乳的CLA气相色谱检测 | 第103-104页 |
| 7．3 本章小结 | 第104-107页 |
| 第八章 结论与建议 | 第107-110页 |
| 8．1 结论 | 第107-108页 |
| 8．2 主要创新点 | 第108-109页 |
| 8．3 进一步研究的建议 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 作者简介 | 第120页 |
