| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 酸乳的概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 酸乳的定义 | 第11页 |
| 1.1.2 酸乳的分类 | 第11页 |
| 1.1.3 酸乳发酵的微生物菌种 | 第11-12页 |
| 1.1.4 酸乳的营养价值和生理功能 | 第12-13页 |
| 1.1.5 viili简介 | 第13页 |
| 1.2 乳酸菌胞外多糖的概述 | 第13-17页 |
| 1.2.1 乳酸菌胞外多糖的简介 | 第13-14页 |
| 1.2.2 乳酸菌胞外多糖的分类、化学组成和结构 | 第14页 |
| 1.2.3 影响乳酸菌胞外多糖产量的因素 | 第14-15页 |
| 1.2.4 乳酸菌胞外多糖的分离纯化 | 第15-16页 |
| 1.2.5 乳酸菌胞外多糖的功能特性 | 第16-17页 |
| 1.3 本课题的立题背景、意义与研究内容 | 第17-19页 |
| 2 发酵乳制品viili中乳酸菌的分离鉴定 | 第19-25页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-21页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 试验设备 | 第19-20页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第20-21页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第21-24页 |
| 2.2.1 菌体形态观察 | 第21页 |
| 2.2.2 糖发酵试验 | 第21-22页 |
| 2.2.3 生理生化试验 | 第22-23页 |
| 2.2.4 16SrDNA基因测序结果 | 第23-24页 |
| 2.3 小结 | 第24-25页 |
| 3 乳酸菌产胞外多糖发酵条件优化的研究 | 第25-34页 |
| 3.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 3.1.1 菌株 | 第25页 |
| 3.1.2 培养基 | 第25页 |
| 3.1.3 试验仪器 | 第25页 |
| 3.1.4 方法 | 第25-27页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第27-33页 |
| 3.2.1 培养基条件优化 | 第27-32页 |
| 3.2.2 培养条件的优化 | 第32-33页 |
| 3.3 小结 | 第33-34页 |
| 4 乳酸菌胞外多糖分离纯化及其结构分析的研究 | 第34-45页 |
| 4.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第34-35页 |
| 4.1.2 培养基 | 第35页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第35页 |
| 4.1.4 方法 | 第35-36页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第36-43页 |
| 4.2.1 DEAE-Sepharose FF离子交换柱分级纯化 | 第36-37页 |
| 4.2.2 Saphrose G100 凝胶层析柱分级纯化 | 第37-38页 |
| 4.2.3 胞外多糖分子量的测定 | 第38-41页 |
| 4.2.4 HPLC法分析胞外多糖的单糖组成 | 第41-43页 |
| 4.3 小结 | 第43-45页 |
| 5 乳酸菌胞外多糖生理活性的研究 | 第45-51页 |
| 5.1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第45页 |
| 5.1.2 试验仪器 | 第45-46页 |
| 5.1.3 方法 | 第46-47页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第47-49页 |
| 5.2.1 淋巴细胞增殖试验 | 第47-48页 |
| 5.2.2 胞外多糖抗氧化性测定 | 第48-49页 |
| 5.3 小结 | 第49-51页 |
| 6 乳酸菌胞外多糖对H2O2 损伤脾细胞的保护作用 | 第51-57页 |
| 6.1 材料与方法 | 第51-53页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第51页 |
| 6.1.2 试验仪器 | 第51页 |
| 6.1.3 方法 | 第51-53页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第53-56页 |
| 6.2.1 甲瓒溶解剂的确定 | 第53页 |
| 6.2.2 双氧水损伤模型的确定 | 第53-54页 |
| 6.2.3 胞外多糖的保护作用 | 第54-55页 |
| 6.2.4 细胞抗氧化酶系酶活的测定 | 第55-56页 |
| 6.3 小结 | 第56-57页 |
| 7 全文总结 | 第57-59页 |
| 7.1 主要结论 | 第57-58页 |
| 7.2 本研究创新点 | 第58页 |
| 7.3 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 在校期间发表的学术论文 | 第64-65页 |
| 作者简介 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
