| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-20页 |
| 1.1 生物胺 | 第8-9页 |
| 1.2 生物胺在黄酒中的研究现状 | 第9-11页 |
| 1.2.1 黄酒中生物胺的产生条件 | 第9页 |
| 1.2.2 影响黄酒中生物胺形成的因素 | 第9-10页 |
| 1.2.3 黄酒中生物胺的安全性讨论 | 第10页 |
| 1.2.4 降低黄酒中生物胺含量的措施 | 第10-11页 |
| 1.3 黄酒麦曲,小曲,红曲的制作工艺及其特点 | 第11-14页 |
| 1.3.1 黄酒麦曲 | 第11-13页 |
| 1.3.2 黄酒红曲 | 第13页 |
| 1.3.3 黄酒小曲 | 第13-14页 |
| 1.4 产生物胺微生物的筛选方法研究 | 第14-16页 |
| 1.4.1 微生物—化学检测 | 第14-16页 |
| 1.4.2 分子生物学检测 | 第16页 |
| 1.5 微生物多样性研究 | 第16-18页 |
| 1.5.1 第一代测序技术在菌群结构分析方面的应用 | 第16-17页 |
| 1.5.2 第二代测序技术在菌群结构分析方面的应用 | 第17-18页 |
| 1.6 本课题研究目的与内容 | 第18-19页 |
| 1.6.1 研究目的 | 第18-19页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第19页 |
| 1.7 本课题研究的主要技术路线 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 酒曲 | 第20页 |
| 2.1.2 质粒与菌株 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20-22页 |
| 2.1.4 主要的仪器与设备 | 第22页 |
| 2.1.5 培养基及各种溶液的配制 | 第22-23页 |
| 2.2 实验的方法及步骤 | 第23-29页 |
| 2.2.1 微生物群落的分离 | 第23-26页 |
| 2.2.2 基因克隆 | 第26-27页 |
| 2.2.3 序列分析 | 第27页 |
| 2.2.4 利用Illumina MiSeq平台对微生物多样性检测 | 第27页 |
| 2.2.5 生物胺产生菌的分离 | 第27页 |
| 2.2.6 高效液相色谱复筛 | 第27-28页 |
| 2.2.7 16S rDNA鉴定 | 第28-29页 |
| 3 结果与讨论 | 第29-53页 |
| 3.1 黄酒曲中细菌菌群结构的研究 | 第29-37页 |
| 3.1.1 利用PCR-DGGE的方法研究细菌菌群结构 | 第29-33页 |
| 3.1.2 高通量测序分析四种黄酒曲中细菌多样性 | 第33-37页 |
| 3.2 黄酒曲中真菌菌群结构的研究 | 第37-45页 |
| 3.2.1 利用PCR-DGGE的方法研究真菌菌群结构 | 第37-42页 |
| 3.2.2 高通量测序对四种黄酒曲中真菌多样性分析 | 第42-45页 |
| 3.3 黄酒曲中生物胺产生菌的分离与鉴定 | 第45-53页 |
| 3.3.1 固体脱羧酶酶培养基初筛 | 第45页 |
| 3.3.2 HPLC检测 | 第45-49页 |
| 3.3.3 菌株鉴定结果 | 第49-53页 |
| 4 结论 | 第53-54页 |
| 5 展望 | 第54-55页 |
| 6 参考文献 | 第55-61页 |
| 7 硕士期间发表论文 | 第61-62页 |
| 8 致谢 | 第62页 |
