乳酸菌胞外多糖生物合成及提高免疫力的研究
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第一章 前言 | 第10-24页 |
·乳酸菌 | 第10-12页 |
·乳酸菌简介 | 第10页 |
·乳酸菌的生理特征 | 第10页 |
·乳酸菌的主要生理作用 | 第10-12页 |
·植物乳杆菌 | 第12页 |
·多糖 | 第12-13页 |
·多糖简介 | 第12-13页 |
·微生物胞外多糖 | 第13页 |
·乳酸菌胞外多糖 | 第13-16页 |
·乳酸菌胞外多糖的分类 | 第13-14页 |
·乳酸菌胞外多糖的结构 | 第14-15页 |
·乳酸菌胞外多糖的化学组成 | 第15页 |
·乳酸菌胞外多糖的生物合成 | 第15-16页 |
·乳酸菌胞外多糖合成中的遗传调控 | 第16页 |
·影响乳酸菌胞外多糖合成的因素 | 第16-19页 |
·菌株遗传特性的影响 | 第17页 |
·培养基 | 第17-18页 |
·温度 | 第18页 |
·时间 | 第18页 |
·pH 值 | 第18页 |
·氧分压 | 第18-19页 |
·乳酸菌胞外多糖的分离纯化 | 第19页 |
·乳酸菌胞外多糖的生理作用 | 第19-21页 |
·抗肿瘤作用 | 第19-20页 |
·免疫调节作用 | 第20页 |
·对消化道功能的调节作用 | 第20-21页 |
·乳酸菌胞外多糖对细胞体的保护 | 第21页 |
·乳酸菌胞外多糖在发酵乳方面的应用 | 第21-22页 |
·本研究目的意义 | 第22-23页 |
·本研究主要内容 | 第23-24页 |
第二章 材料与方法 | 第24-36页 |
·实验材料 | 第24-26页 |
·试剂与药品 | 第24-25页 |
·培养基 | 第25页 |
·仪器与设备 | 第25-26页 |
·菌株 | 第26页 |
·动物实验 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-33页 |
·乳酸菌的分离 | 第26页 |
·高产胞外多糖乳酸菌的筛选 | 第26-27页 |
·EPS 醇沉条件的确定 | 第27页 |
·EPS 脱蛋白实验的研究 | 第27-28页 |
·EPS 生物合成条件的研究 | 第28-29页 |
·高产 EPS 乳酸菌的最适培养条件的确定 | 第29-30页 |
·利用干酪副产物乳清生产 EPS 的研究 | 第30页 |
·胞外多糖的初步分离 | 第30-32页 |
·EPS 毒性及免疫功能的研究 | 第32-33页 |
·测定方法 | 第33-36页 |
·EPS 的测定 | 第33-34页 |
·EPS 中蛋白值含量的测定 | 第34-36页 |
第三章 结果与讨论 | 第36-60页 |
·高产胞外多糖乳酸菌菌株的筛选 | 第36页 |
·EPS 醇沉条件的确定 | 第36-37页 |
·EPS 脱蛋白实验的研究 | 第37-42页 |
·Sevag 法脱蛋白 | 第37-38页 |
·三氯乙酸法脱蛋白 | 第38页 |
·酶法脱蛋白 | 第38-41页 |
·酶法脱蛋白最佳条件的优化 | 第41-42页 |
·EPS 生物合成条件的研究 | 第42-49页 |
·最适生长基本培养基的确定 | 第43页 |
·碳源的影响 | 第43-45页 |
·氮源的影响 | 第45页 |
·碳氮比的影响 | 第45-46页 |
·盐类的影响 | 第46-47页 |
·培养基初始 pH 值的影响 | 第47页 |
·温度的影响 | 第47-48页 |
·时间的影响 | 第48-49页 |
·接种量的影响 | 第49页 |
·高产 EPS 乳酸菌的最适培养条件的确定 | 第49-51页 |
·利用干酪副产物乳清生产 EPS 的研究 | 第51-52页 |
·胞外多糖分离纯化的研究 | 第52-56页 |
·多糖的制备 | 第52页 |
·EPS 的紫外全波长扫描 | 第52-53页 |
·DEAE-52 纤维素柱层析分离纯化 | 第53-54页 |
·Sephadex G-200 柱层析纯化 | 第54页 |
·Sephadex G-100 柱层析纯化 | 第54-55页 |
·乳酸菌胞外多糖分子量的测定 | 第55-56页 |
·EPS 毒性及免疫功能的研究 | 第56-60页 |
·急性毒性试验 | 第56页 |
·脏器/体重比值测定 | 第56页 |
·迟发型变态反应(DTH)(足跖增厚法) | 第56-57页 |
·小鼠廓清指数实验 | 第57-58页 |
·小鼠血清溶血值测定 | 第58页 |
·淋巴细胞增殖功能检测 | 第58-60页 |
第四章 结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
在读期间发表的文章 | 第67页 |