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5种动物源成分PCR和RPA检测可视化鉴定方法的研究

摘要第7-9页
ABSTRACT第9-10页
英文缩写词表第11-12页
第一章 文献综述第12-20页
    1.1 我国肉类消费产品消费概述第12-13页
    1.2 肉类及肉制品中动物源性成分检测方法概述第13-16页
        1.2.1 基于蛋白水平的检测方法第13-14页
        1.2.2 基于DNA水平的检测方法第14-16页
    1.3 重组酶聚合酶扩增法(Recombinase Polymerase Amplification,RPA)第16-18页
        1.3.1 RPA概述第16页
        1.3.2 重组酶聚合酶扩增法基本原理第16-17页
        1.3.3 重组酶聚合酶扩增法技术特点第17页
        1.3.4 RPA及PCR扩增结果观察方式的优化第17-18页
        1.3.5 RPA的应用第18页
    1.4 主要研究内容第18-20页
第二章 PCR与RPA方法检测牛、羊、鸡、鸭和猪肉成分第20-38页
    1 材料与方法第20-28页
        1.1 试验动物第20页
        1.2 试验试剂第20-21页
        1.3 基因组DNA的提取第21页
        1.4 种属特异性的引物设计第21-22页
        1.5 物种动物源性成分检测用引物目的序列的克隆第22-27页
        1.6 5种动物源成分检测用引物的RPA扩增第27页
        1.7 5种动物源成分检测引物的最低检测拷贝数第27-28页
        1.8 用人体体表温度进行RPA反应第28页
    2 结果与分析第28-34页
        2.1 5种动物源成分检测引物的筛选第28-30页
        2.2 引物进行PCR与RPA扩增的灵敏度第30-34页
        2.3 用人体体表温度进行RPA反应第34页
    3 讨论第34-38页
        3.1 5种动物源成分检测引物的设计第34-35页
        3.2 引物在PCR与RPA扩增的假阳性防治与建议第35-36页
        3.3 PCR与RPA动物源成分检测引物灵敏度的对比第36-37页
        3.4 PCR与RPA检测的比较第37-38页
第三章 5种动物源性成分PCR与RPA的可视化鉴定第38-64页
    1 材料与方法第38-40页
        1.1 试验材料第38页
        1.2 试验试剂第38页
        1.3 动物源成分PCR与RPA可视化鉴定最低质粒拷贝数的检测第38-39页
        1.4 动物源成分PCR与RPA可视化鉴定最低总DNA浓度的检测第39页
        1.5 不同热处理方式对可视化检测的影响第39-40页
        1.6 模拟掺假肉的制备与检测模拟样品第40页
    2 结果与分析第40-60页
        2.1 可视化结果的最低质粒模板浓度第40-45页
        2.2 动物源成分PCR与RPA可视化鉴定最低总DNA浓度的检测第45-51页
        2.3 不同热处理方式对可视化检测的影响第51-58页
        2.4 PCR与RPA对模拟掺假样品检测结果第58-60页
    3 讨论第60-64页
        3.1 质粒模板PCR与RPA可视化及电泳检测的比较第60-61页
        3.2 总DNA模板PCR与RPA可视化及电泳检测的比较第61-62页
        3.3 RPA与PCR的可视化对比第62页
        3.4 不同热处理方式对可视化检测的影响第62-64页
第四章 UvsX、UvsY和Gp32的原核表达及纯化条件分析第64-78页
    1 材料与方法第64-68页
        1.1 试验材料第64页
        1.2 uvsX、uvsY和gp32的全基因合成与重组质粒构建第64页
        1.3 质粒的小量提取第64-65页
        1.4 小量菌液的诱导表达第65页
        1.5 变性条件下蛋白纯化第65-68页
        1.6 大量菌液的诱导表达第68页
    2 结果与分析第68-74页
        2.1 诱导表达及蛋白纯化条件第68-73页
        2.2 大量菌液的诱导表达第73-74页
    3 讨论第74-78页
        3.1 UvsX、UvsY和Gp32的原核表达菌株的选取第74页
        3.2 密码子优化对UvsX、UvsY和Gp32表达的影响第74-75页
        3.3 UvsX、UvsY和Gp32小量诱导与大量连续诱导的条件第75-76页
        3.4 蛋白纯化条件第76-78页
结论第78-80页
参考文献第80-88页
附录第88-92页
致谢第92页

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