| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写符号说明 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-31页 |
| 1.1 食物过敏 | 第15-22页 |
| 1.1.1 食物过敏流行病学分析 | 第15-17页 |
| 1.1.2 食物过敏免疫学机制 | 第17-22页 |
| 1.2 Notch信号途径 | 第22-29页 |
| 1.2.1 Notch信号途径概述 | 第23-24页 |
| 1.2.2 Notch信号在树突状细胞中的作用 | 第24-25页 |
| 1.2.3 Notch信号在T细胞中的作用 | 第25-28页 |
| 1.2.4 Notch信号在肥大细胞中的作用 | 第28页 |
| 1.2.5 Notch信号在相关疾病中的作用 | 第28-29页 |
| 1.3 本研究的目的和内容 | 第29-31页 |
| 1.3.1 本研究的目的及意义 | 第29页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第29-31页 |
| 第二章 Notch信号途径在小鼠食物过敏中的作用研究 | 第31-47页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 材料和设备 | 第31-36页 |
| 2.2.1 主要材料和试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第32页 |
| 2.2.3 实验动物 | 第32页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第36页 |
| 2.3 结果与分析 | 第36-43页 |
| 2.3.1 不同抑制剂对Notch信号途径的抑制作用 | 第36-37页 |
| 2.3.2 抑制Notch信号途径对特异性IgE、IgG_1及IgG_(2a)抗体水平的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.3 抑制Notch信号途径对不同细胞因子分泌的影响 | 第38-39页 |
| 2.3.4 抑制Notch信号途径对细胞脱颗粒的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.5 抑制Notch信号途径对小鼠肠道通透性和血管渗透性的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.6 抑制Notch信号途径对小鼠过敏临床症状的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.7 抑制Notch信号途径对Gata-3和T-bet表达的影响 | 第42页 |
| 2.3.8 不同组小鼠组织病理学分析 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第三章 Notch信号途径在食物过敏致敏阶段的作用研究 | 第47-59页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 材料与方法 | 第47-50页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第47页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第47-48页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第48页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第50页 |
| 3.3 结果与分析 | 第50-56页 |
| 3.3.1 BMDC鉴定 | 第50页 |
| 3.3.2 OVA刺激对BMDC不同Notch配体表达的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.3 抑制Notch途径对Th2型细胞因子分泌的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.4 Jagged1-Fc融合蛋白对CD4~+T细胞细胞因子分泌的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.5 Jagged1-Notch信号途径对Gata-3表达的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.6 Jagged1-Fc对小鼠食物过敏反应发生的影响 | 第54-56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 Notch信号途径在食物过敏效应阶段的作用研究 | 第59-73页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 材料与方法 | 第59-62页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第59页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实验细胞和动物 | 第60页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第60-62页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第62页 |
| 4.3 结果与分析 | 第62-69页 |
| 4.3.1 RBL-2H3细胞表达Notch受体情况 | 第62-63页 |
| 4.3.2 不同Notch配体对RBL-2H3细胞Notch信号途径激活及细胞增殖的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.3 不同Notch配体对RBL-2H3细胞脱颗粒及细胞因子分泌的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.4 Dlll-Notch信号对FcεRI介导的MAPKs的磷酸化水平的影响 | 第65-67页 |
| 4.3.5 Dlll-Notch信号对Dok-1表达水平的影响 | 第67页 |
| 4.3.6 Dok-1对RBL-2H3细胞脱颗粒及细胞因子分泌的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.7 小鼠体内抑制Notch信号对效应细胞脱颗粒的影响 | 第68-69页 |
| 4.4 讨论 | 第69-71页 |
| 4.5 本章小结 | 第71-73页 |
| 第五章 霍乱毒素发挥免疫调节作用的机制研究 | 第73-85页 |
| 5.1 引言 | 第73页 |
| 5.2 材料与方法 | 第73-76页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第73页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第73-74页 |
| 5.2.3 实验动物 | 第74页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第74-76页 |
| 5.2.5 数据分析 | 第76页 |
| 5.3 结果与分析 | 第76-82页 |
| 5.3.1 CT对小鼠食物过敏反应的影响 | 第76-78页 |
| 5.3.2 CT对不同Notch配体表达的影响 | 第78页 |
| 5.3.3 CT对BMDC表面Notch配体表达的影响 | 第78-79页 |
| 5.3.4 CT对BMDC介导的Th细胞分化的影响 | 第79-80页 |
| 5.3.5 Jagged2-Notch信号对Th2细胞分化的影响 | 第80页 |
| 5.3.6 CT对小鼠肠道菌群的影响 | 第80-82页 |
| 5.4 讨论 | 第82-84页 |
| 5.5 本章小结 | 第84-85页 |
| 第六章 全文总结 | 第85-86页 |
| 6.1 主要结论 | 第85页 |
| 6.2 创新点 | 第85页 |
| 6.3 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 作者简介 | 第99页 |
