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黑提果渣中花色苷的提取、纯化及微胶囊化研究

摘要第3-6页
ABSTRACT第6-9页
第1章 引言第16-28页
    1.1 黑提及花色苷简介第16-18页
        1.1.1 黑提概述第16页
        1.1.2 花色苷的概述第16-18页
            1.1.2.1 花色苷的结构第16-17页
            1.1.2.2 花色苷的稳定性第17-18页
            1.1.2.3 花色苷的功能特性及其应用第18页
    1.2 国内外研究现状第18-26页
        1.2.1 花色苷的检测分析方法第18-21页
            1.2.1.1 纸层析法第18-19页
            1.2.1.2 紫外可见吸收光谱法第19页
            1.2.1.3 高效液相色谱法第19-20页
            1.2.1.4 高效液相-质谱法第20页
            1.2.1.5 红外吸收光谱法(NIR)第20页
            1.2.1.6 核磁共振波谱法(NMR)第20-21页
        1.2.2 花色苷提取方法第21-23页
            1.2.2.1 有机溶剂萃取法第21页
            1.2.2.2 微波辅助提取法第21-22页
            1.2.2.3 酶法水解第22页
            1.2.2.4 超临界萃取法第22-23页
            1.2.2.5 超声-微波协同提取法第23页
        1.2.3 花色苷分离纯化方法第23-25页
            1.2.3.1 膜过滤法第23页
            1.2.3.2 大孔树脂层析法第23-24页
            1.2.3.3 双水相萃取法第24-25页
        1.2.4 微胶囊技术第25-26页
            1.2.4.1 微胶囊基本概念第25页
            1.2.4.2 微胶囊制备方法第25-26页
            1.2.4.3 微胶囊在食品加工中的应用第26页
    1.3 课题的研究目的意义及研究内容第26-28页
        1.3.1 课题的研究目的和意义第26-27页
        1.3.2 课题的研究内容第27-28页
第2章 黑提果渣中花色苷的分析方法第28-42页
    2.1 引言第28页
    2.2 试验原料、仪器与试剂第28-29页
        2.2.1 试验原料和试剂第28页
        2.2.2 仪器与设备第28-29页
    2.3 试验方法第29-33页
        2.3.1 黑提果渣中花色苷的提取制备第29页
        2.3.2 紫外pH示差法第29-30页
            2.3.2.1 缓冲溶液的配制第29-30页
            2.3.2.2 紫外全波段扫描第30页
            2.3.2.3 紫外pH示差法测定方法第30页
        2.3.3 高效液相色谱HPLC法第30-32页
            2.3.3.1 液相色谱条件的优化第30-32页
            2.3.3.2 标准曲线的建立第32页
            2.3.3.3 精密度、回收率、最低检测限和最低定量限的测定第32页
        2.3.4 紫外pH示差法与高效液相色谱HPLC法对比第32-33页
        2.3.5 数据处理第33页
    2.4 结果与分析第33-40页
        2.4.1 紫外pH示差法测总花色苷含量第33-34页
        2.4.2 高效液相色谱HPLC法第34-40页
            2.4.2.1 色谱条件优化结果第34-39页
            2.4.2.2 液相色谱标准曲线的确定第39页
            2.4.2.3 精密度、回收率、最低检测限和最低定量限的测定结果第39-40页
        2.4.3 紫外pH示差法与高效液相色谱HPLC法对比第40页
    2.5 本章小结第40-42页
第3章 黑提果渣中花色苷提取工艺研究第42-58页
    3.1 引言第42页
    3.2 试验原料、仪器与试剂第42-43页
        3.2.1 试验原料和试剂第42页
        3.2.2 仪器与设备第42-43页
    3.3 试验方法第43-45页
        3.3.1 微波辅助提取法工艺研究第43-44页
            3.3.1.1 微波辅助提取法单因素试验第43页
            3.3.1.2 微波辅助提取响应面试验设计第43-44页
        3.3.2 超声-微波协同提取法工艺研究第44-45页
            3.3.2.1 超声-微波协同提取单因素试验第44页
            3.3.2.2 超声-微波协同提取响应面试验设计第44-45页
        3.3.3 数据处理第45页
    3.4 结果与分析第45-56页
        3.4.1 微波辅助提取法工艺研究第45-51页
            3.4.1.1 提取时间的优化第45-46页
            3.4.1.2 提取功率的优化第46页
            3.4.1.3 料液比的优化第46-47页
            3.4.1.4 乙醇浓度的优化第47-48页
            3.4.1.5 微波辅助提取响应面试验结果第48-51页
        3.4.2 超声-微波协同提取法工艺研究第51-56页
            3.4.2.1 提取时间的优化第51页
            3.4.2.2 提取功率的优化第51-52页
            3.4.2.3 料液比的优化第52-53页
            3.4.2.4 乙醇浓度的优化第53页
            3.4.2.5 超声-微波协同提取响应面试验结果第53-56页
        3.4.3 微波辅助提取法和超声-微波协同提取法比较第56页
    3.5 本章小结第56-58页
第4章 黑提果渣花色苷纯化及结构鉴定第58-85页
    4.1 引言第58页
    4.2 试验原料、仪器与试剂第58-59页
        4.2.1 试验原料和试剂第58页
        4.2.2 仪器与设备第58-59页
    4.3 试验方法第59-63页
        4.3.1 树脂的预处理第59页
        4.3.2 最佳树脂的筛选第59-60页
        4.3.3 X-5树脂的静态吸附与解吸第60-61页
            4.3.3.1 静态吸附条件优化第60-61页
            4.3.3.2 静态解吸条件优化第61页
        4.3.4 X-5树脂的动态吸附与解吸第61页
            4.3.4.1 动态吸附流速的确定第61页
            4.3.4.2 动态解吸流速的确定第61页
        4.3.5 纯化前后X-5树脂回收率的测定第61-62页
        4.3.6 纯化前后花色苷色价和纯度的测定第62页
        4.3.7 花色苷结构鉴定分析方法的建立第62-63页
            4.3.7.1 高效液相色谱HPLC条件第62页
            4.3.7.2 液质联用LCMS条件第62页
            4.3.7.3 测定方法第62-63页
        4.3.8 数据处理第63页
    4.4 结果与分析第63-83页
        4.4.1 最佳树脂的筛选第63页
        4.4.2 X-5树脂的静态吸附与解吸第63-66页
            4.4.2.1 静态吸附平衡时间的确定第63-64页
            4.4.2.2 静态吸附的上样液浓度确定第64-65页
            4.4.2.3 静态吸附的上样液pH值确定第65页
            4.4.2.4 静态解吸的乙醇浓度确定第65-66页
        4.4.3 X-5树脂的动态吸附与解吸第66-67页
            4.4.3.1 动态吸附流速的确定第66-67页
            4.4.3.2 动态解吸流速的确定第67页
        4.4.4 纯化前后花色苷色价、纯度及纯化回收率的测定结果第67-68页
        4.4.5 黑提果渣中花色苷结构鉴定第68-83页
            4.4.5.1 标准品(矢车菊素-3-O-葡萄糖苷)裂解方式第68-70页
            4.4.5.2 黑提果渣中花色苷结构的鉴定第70-83页
    4.5 本章小结第83-85页
第5章 黑提果渣中花色苷微胶囊化的研究第85-100页
    5.1 引言第85页
    5.2 试验原料、仪器与试剂第85-86页
        5.2.1 试验原料和试剂第85页
        5.2.2 仪器与设备第85-86页
    5.3 试验方法第86-90页
        5.3.1 黑提花色苷微胶囊的制备及工艺优化第86-88页
            5.3.1.1 黑提花色苷微胶囊的制备第86-87页
            5.3.1.2 壁材的选择第87页
            5.3.1.3 芯壁比选择第87页
            5.3.1.4 进风温度选择第87-88页
            5.3.1.5 出风温度选择第88页
        5.3.2 黑提花色苷微胶囊产品的评价指标第88-89页
            5.3.2.1 微胶囊化效率的测定方法第88页
            5.3.2.2 花色苷损失率的测定方法第88页
            5.3.2.3 微胶囊产品含水量的测定方法第88-89页
            5.3.2.4 微胶囊产品色价的测定方法第89页
            5.3.2.5 微胶囊产品的活性成分测定第89页
            5.3.2.6 微胶囊产品的微观结构第89页
        5.3.3 黑提花色苷及其微胶囊产品稳定性分析第89-90页
            5.3.3.1 不同温度对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第89页
            5.3.3.2 不同光照条件对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第89-90页
            5.3.3.3 不同金属离子对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第90页
        5.3.4 数据处理第90页
    5.4 结果与分析第90-99页
        5.4.1 喷雾干燥条件的优化第90-95页
            5.4.1.1 壁材的选择第90-91页
            5.4.1.2 芯壁比的选择第91-92页
            5.4.1.3 进风温度的优化第92-94页
            5.4.1.4 出风温度的优化第94-95页
        5.4.2 黑提花色苷微胶囊产品的指标评价第95-97页
            5.4.2.1 微胶囊产品的活性成分测定第95页
            5.4.2.2 微胶囊产品的微观结构第95-97页
        5.4.3 黑提花色苷及其微胶囊产品稳定性测定结果第97-99页
            5.4.3.1 不同温度对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第97页
            5.4.3.2 不同光照对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第97-98页
            5.4.3.3 金属离子对花色苷及其微胶囊产品稳定性影响第98-99页
    5.5 本章小结第99-100页
第6章 结论第100-102页
    6.1 结论第100-101页
    6.2 创新第101页
    6.3 展望第101-102页
参考文献第102-109页
硕士期间发表论文情况第109-110页
致谢第110-112页

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